| 摘要 | 第1-3页 |
| Abstract | 第3-7页 |
| 引言 | 第7-9页 |
| 第一部分 5’-AMP诱导构建大鼠低温模型 | 第9-21页 |
| 第一章 实验材料和方法 | 第9-12页 |
| ·实验材料 | 第9-10页 |
| ·实验动物 | 第9页 |
| ·主要仪器与试剂 | 第9-10页 |
| ·实验方法 | 第10-12页 |
| ·研究对象分组 | 第10页 |
| ·药剂的配制 | 第10页 |
| ·5’-AMP溶液的配制 | 第10页 |
| ·氢氧化钠溶液的配制 | 第10页 |
| ·盐酸溶液的配制 | 第10页 |
| ·模型的制备 | 第10-11页 |
| ·观察指标及评价方法 | 第11-12页 |
| ·大鼠体温的测量 | 第11页 |
| ·大鼠心率的测量 | 第11页 |
| ·大鼠呼吸频率的测量 | 第11页 |
| ·数据处理与统计学分析 | 第11-12页 |
| 第二章 实验结果 | 第12-16页 |
| ·5’-AMP成功诱导大鼠低温 | 第12-14页 |
| ·5’-AMP诱导的低温降低大鼠的心率和呼吸频率 | 第14-16页 |
| 第三章 讨论 | 第16-21页 |
| ·5’-AMP诱导低温的作用 | 第17-18页 |
| ·5’-AMP的其他作用 | 第18-21页 |
| 第二部分 5’-AMP诱导的低温抑制痛风性关节炎早期炎症反应 | 第21-51页 |
| 第一章 实验材料和方法 | 第21-29页 |
| ·实验材料 | 第21-23页 |
| ·实验动物 | 第21页 |
| ·主要试剂 | 第21-22页 |
| ·主要器械、设备 | 第22-23页 |
| ·实验方法 | 第23-29页 |
| ·研究对象分组 | 第23页 |
| ·药剂的配制 | 第23-24页 |
| ·MSU结晶及MSU溶液的配制 | 第23页 |
| ·分离胶缓冲液的配制 | 第23页 |
| ·浓缩胶缓冲液的配制 | 第23-24页 |
| ·十二烷基硫酸钠SD S溶液的配制 | 第24页 |
| ·转移缓冲液的配制 | 第24页 |
| ·模型的制备 | 第24页 |
| ·观察指标及评价方法 | 第24-29页 |
| ·大鼠踝关节周径的测量 | 第24-25页 |
| ·大鼠血清中IL-1β和MMP-9的检测 | 第25-26页 |
| ·大鼠关节滑膜的病理切片 | 第26页 |
| ·关节滑膜组织中NF-KB活性的检测 | 第26-28页 |
| ·数据处理与统计学分析 | 第28-29页 |
| 第二章 实验结果 | 第29-44页 |
| ·MSU晶体成功诱导大鼠急性痛风性关节炎 | 第29-31页 |
| ·5’-AMP诱导的低温可以降低炎症关节的肿胀度 | 第31-33页 |
| ·5’-AMP诱导的低温降低急性痛风性关节炎大鼠外周IL-1β和MMP-9水平 | 第33-35页 |
| ·5’-AMP诱导的低温对于急性痛风性关节炎大鼠关节滑膜具有保护作用 | 第35-42页 |
| ·5-AMP诱导的低温可以抑制关节滑膜组织中的NF-kB的活性 | 第42-44页 |
| 第三章 讨论 | 第44-51页 |
| ·5’-AMP诱导的低温对于急性痛风性关节炎的作用 | 第45-49页 |
| ·IL-1β在痛风性关节炎发生发展过程中的作用 | 第45-46页 |
| ·MMP-9在痛风性关节炎发生、发展过程中的作用 | 第46-48页 |
| ·痛风性关节炎大鼠关节滑膜组织的病变 | 第48页 |
| ·NF-KB通路在痛风性关节炎发生发展过程中的作用 | 第48-49页 |
| ·5’-AMP诱导的低温抑制炎症的可能机制 | 第49-51页 |
| 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-60页 |
| 综述 | 第60-87页 |
| 综述的参考文献 | 第77-87页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第87-88页 |
| 致谢 | 第88-89页 |
