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微流控浓度梯度芯片的研制及其在药物筛选中的应用

摘要第5-6页
Abstract第6-7页
第1章 绪论第10-31页
    1.1 微流控芯片第10-11页
        1.1.1 微流控学科简介第10页
        1.1.2 PDMS材料第10-11页
    1.2 微流控芯片上的浓度梯度生成器第11-23页
        1.2.1 基质粘附型浓度梯度生成器第13-14页
        1.2.2 时间演化型浓度梯度生成器第14-16页
        1.2.3 并流型浓度梯度生成器第16-18页
        1.2.4 流阻型浓度梯度生成器第18-22页
        1.2.5 对流扩散型浓度梯度生成器第22-23页
    1.3 微流控芯片在细胞研究中的应用第23-31页
        1.3.1 细胞外基质第23-24页
        1.3.2 肝细胞培养第24-25页
        1.3.3 骨细胞培养第25页
        1.3.4 对贴壁细胞的刺激第25-26页
        1.3.5 对悬浮细胞的刺激第26-27页
        1.3.6 药物筛选第27-28页
        1.3.7 细胞分选第28-31页
第2章 微流控浓度梯度芯片的设计和制作第31-41页
    2.1 引言第31页
    2.2 实验部分第31-40页
        2.2.1 试剂与仪器第31-32页
        2.2.2 芯片的设计思路第32-33页
        2.2.3 细胞培养腔尺寸的选择第33-34页
        2.2.4 单层芯片和双层芯片内细胞分布的对比第34-35页
        2.2.5 芯片的设计和制作第35-36页
        2.2.6 PDMS通道内气泡的影响和排除第36-37页
        2.2.7 “圣诞树”形成浓度梯度的原理及浓度梯度的表征第37-40页
    2.3 小结第40-41页
第3章 微流控浓度梯度芯片用于药物筛选第41-53页
    3.1 引言第41页
    3.2 实验部分第41-46页
        3.2.1 试剂和仪器第41-42页
        3.2.2 细胞培养相关溶液的配制第42-43页
        3.2.3 细胞培养操作过程第43-44页
        3.2.4 微流控芯片上细胞的引入和培养第44-45页
        3.2.5 微流控芯片上药物浓度梯度诱导Hela细胞凋亡实验第45页
        3.2.6 微流控芯片上心肌细胞的缺氧复氧损伤实验及药物的保护实验第45-46页
    3.3 结果与讨论第46-53页
        3.3.1 药物诱导Hela细胞凋亡第46-49页
        3.3.2 微流控芯片上心肌细胞的缺氧复氧损伤实验及药物的保护实验第49-52页
        3.3.3 小结第52-53页
第4章 结论第53-54页
参考文献第54-62页
致谢第62页

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