| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5页 |
| 1 前言 | 第8-20页 |
| 1.1 虾夷扇贝的研究背景 | 第8-9页 |
| 1.1.1 虾夷扇贝形态和生活习性 | 第8页 |
| 1.1.3 虾夷扇贝药用研究 | 第8-9页 |
| 1.2 糖胺聚糖 | 第9-14页 |
| 1.2.1 糖胺聚糖的分类及结构 | 第10页 |
| 1.2.2 糖胺聚糖的提取 | 第10-12页 |
| 1.2.3 糖胺聚糖的纯化 | 第12-13页 |
| 1.2.4 糖胺聚糖的分析测定方法 | 第13-14页 |
| 1.3 糖胺聚糖生物活性研究 | 第14-18页 |
| 1.3.1 抗氧化活性 | 第15-17页 |
| 1.3.2 抗凝血活性 | 第17页 |
| 1.3.3 抗肿瘤活性 | 第17-18页 |
| 1.4 本研究的内容和目的意义 | 第18-20页 |
| 1.4.1 研究的主要内容 | 第18页 |
| 1.4.2 研究的目的和意义 | 第18-20页 |
| 2 材料和方法 | 第20-29页 |
| 2.1 实验材料 | 第20-21页 |
| 2.1.1 实验原料 | 第20页 |
| 2.1.2 药品及试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.3 主要仪器和设备 | 第21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-29页 |
| 2.2.1 原材料预处理 | 第21页 |
| 2.2.2 虾夷扇贝下脚料糖胺聚糖提取 | 第21-22页 |
| 2.2.3 虾夷扇贝下脚料总糖胺聚糖含量测定 | 第22页 |
| 2.2.4 糖胺聚糖提取单因素实验 | 第22-23页 |
| 2.2.5 响应面法优化糖胺聚糖提取工艺 | 第23-24页 |
| 2.2.6 糖胺聚糖紫外吸收光谱 | 第24页 |
| 2.2.7 糖胺聚糖化学组成测定 | 第24-25页 |
| 2.2.8 糖胺聚糖红外光谱分析 | 第25页 |
| 2.2.9 糖胺聚糖高效液相色谱测定 | 第25页 |
| 2.2.10 糖胺聚糖抗氧化活性 | 第25-27页 |
| 2.2.11 糖胺聚糖抗凝血活性 | 第27-28页 |
| 2.2.12 糖胺聚糖抗肿瘤活性研究 | 第28-29页 |
| 3 结果与讨论 | 第29-49页 |
| 3.1 虾夷扇贝下脚料糖胺聚糖的一般理化性质 | 第29页 |
| 3.2 糖胺聚糖提取工艺单因素实验 | 第29-33页 |
| 3.2.1 不同酶种类对糖胺聚糖提取率的影响 | 第29-30页 |
| 3.2.2 不同料液比对糖胺聚糖提取率的影响 | 第30-31页 |
| 3.2.3 酶解温度对糖胺聚糖提取率的影响 | 第31页 |
| 3.2.4 酶解时间对糖胺聚糖提取率的影响 | 第31-32页 |
| 3.2.5 酶解pH值对糖胺聚糖提取率的影响 | 第32-33页 |
| 3.3 响应面法优化糖胺聚糖提取工艺 | 第33-38页 |
| 3.4 糖胺聚糖紫外-可见光吸收光谱 | 第38-39页 |
| 3.5 糖胺聚糖化学组成 | 第39-40页 |
| 3.6 糖胺聚糖红外光谱分析 | 第40-41页 |
| 3.7 糖胺聚糖高效液相色谱测定及分析 | 第41-42页 |
| 3.8 糖胺聚糖抗氧化作用 | 第42-45页 |
| 3.8.1 糖胺聚糖对羟基自由基(HO·)清除作用的研究结果及分析 | 第42页 |
| 3.8.2 糖胺聚糖对超氧阴离子(O_2~-)清除作用 | 第42-43页 |
| 3.8.3 糖胺聚糖对DPPH自由基清除作用 | 第43-44页 |
| 3.8.4 糖胺聚糖的还原能力 | 第44页 |
| 3.8.5 糖胺聚糖的金属螯合能力 | 第44-45页 |
| 3.9 糖胺聚糖体外抗凝血活性 | 第45-48页 |
| 3.9.1 凝血酶原时间(PT) | 第45-46页 |
| 3.9.2 凝血酶时间(TT) | 第46-47页 |
| 3.9.3 活化部分凝血活酶时间(APTT) | 第47-48页 |
| 3.10 糖胺聚糖抗肿瘤活性测定 | 第48-49页 |
| 4 结论 | 第49-50页 |
| 4.1 糖胺聚糖的分离纯化 | 第49页 |
| 4.2 糖胺聚糖的组成结构分析 | 第49页 |
| 4.3 糖胺聚糖的生物活性 | 第49-50页 |
| 5 展望 | 第50-51页 |
| 6 参考文献 | 第51-60页 |
| 7 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第60-61页 |
| 8 致谢 | 第61页 |