摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
引言 | 第13-26页 |
1 抗病性研究简史 | 第13-14页 |
2 抗叶锈性的类型 | 第14页 |
3 抗病遗传研究方法 | 第14-19页 |
3.1 基因推导法 | 第14-15页 |
3.2 常规杂交法 | 第15页 |
3.3 染色体定位法 | 第15-16页 |
3.3.1 单体分析法 | 第15-16页 |
3.3.2 缺体分析法 | 第16页 |
3.3.3 端体分析法 | 第16页 |
3.4 分子标记法 | 第16-19页 |
3.4.1 限制性片段长度多态性(RFLP标记) | 第16-17页 |
3.4.2 随机扩增多态性DNA(RAPD标记) | 第17页 |
3.4.3 扩增片段长度多态性(AFLP标记) | 第17页 |
3.4.4 序列标志位点(STS标记) | 第17页 |
3.4.5 抗病基因类似物(RGA标记) | 第17-18页 |
3.4.6 序列特异扩增区域(SCAR标记) | 第18页 |
3.4.7 单核苷酸多态性(SNP标记) | 第18页 |
3.4.8 简单重复序列(SSR标记) | 第18-19页 |
3.4.9 表达序列标签(EST标记) | 第19页 |
4 成株抗叶锈基因QTL作图 | 第19-22页 |
4.1 QTL分析步骤 | 第19-20页 |
4.2 QTL分析方法 | 第20-22页 |
4.2.1 单标记分析法(Single marker analysis,SMA) | 第20页 |
4.2.2 区间作图法(interval mapping,IM) | 第20-21页 |
4.2.3 复合区间作图(composite interval mapping,CIM) | 第21页 |
4.2.4 基于混合线性模型的复合区间作图(mixed composite interval mapping,MCIM) | 第21页 |
4.2.5 完备复合区间作图(improved composite interval mapping,ICIM) | 第21-22页 |
4.3 QTL定位阈值 | 第22页 |
5 小麦抗叶锈基因的研究进展 | 第22-24页 |
5.1 主要苗期抗性基因 | 第22-23页 |
5.2 主要成株抗性基因 | 第23-24页 |
5.3 其他抗性基因 | 第24页 |
6 本研究意义及主要内容 | 第24-26页 |
第一章 CIMMYT小麦品系 19HRWSN-122中抗叶锈病基因定位 | 第26-38页 |
1 材料与方法 | 第26-32页 |
1.1 试验材料 | 第26-28页 |
1.1.1 植物材料 | 第26-28页 |
1.1.2 菌种材料 | 第28页 |
1.1.3 主要试剂 | 第28页 |
1.1.4 主要仪器 | 第28页 |
1.2 试验方法 | 第28-32页 |
1.2.1 菌种纯化及扩繁 | 第28-29页 |
1.2.2 苗期抗病性鉴定 | 第29页 |
1.2.3 田间抗叶锈性鉴定 | 第29页 |
1.2.4 基因组DNA的提取 | 第29-30页 |
1.2.5 DNA的浓度测定 | 第30页 |
1.2.6 BSA方法分析 | 第30页 |
1.2.7 分子标记筛选 | 第30页 |
1.2.8 反应体系及PCR扩增程序 | 第30-31页 |
1.2.9 非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第31页 |
1.2.10 遗传作图 | 第31-32页 |
2 结果与分析 | 第32-36页 |
2.1 19HRWSN-122和36个具有已知基因的近等基因系的苗期反应型 | 第32页 |
2.2 19HRWSN-122中抗叶锈病基因的遗传分析 | 第32-33页 |
2.3 连锁分析与遗传作图 | 第33-34页 |
2.4 Lr24和Lr HR122基因的关系 | 第34-35页 |
2.5 多态性分子标记的验证 | 第35-36页 |
3 讨论 | 第36-38页 |
3.1 Lr24的分子作图 | 第36页 |
3.2 KS91WGRC11在中国不适合作为Lr42的载体材料 | 第36-37页 |
3.3 中国小麦叶锈抗病育种 | 第37-38页 |
第二章 中国小麦品种LB0288中抗叶锈病基因定位 | 第38-45页 |
1 材料与方法 | 第38-42页 |
1.1 试验材料 | 第38页 |
1.1.1 植物材料 | 第38页 |
1.1.2 菌种材料 | 第38页 |
1.1.3 主要试剂 | 第38页 |
1.1.4 主要仪器设备 | 第38页 |
1.2 试验方法 | 第38-42页 |
1.2.1 菌种的纯化及扩繁 | 第38-41页 |
1.2.2 基因推导 | 第41页 |
1.2.3 叶片总DNA的提取 | 第41页 |
1.2.4 DNA的浓度测定 | 第41页 |
1.2.5 抗感池建立 | 第41页 |
1.2.6 SSR标记筛选 | 第41页 |
1.2.7 PCR反应 | 第41页 |
1.2.8 STS引物及PCR扩增 | 第41-42页 |
1.2.9 变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第42页 |
1.2.10 连锁分析和遗传作图 | 第42页 |
2 结果与分析 | 第42-44页 |
2.1 苗期基因推导 | 第42页 |
2.2 遗传分析 | 第42-43页 |
2.3 分子标记筛选和基因定位 | 第43-44页 |
3 讨论 | 第44-45页 |
Lr1和Lr LB88的关系 | 第44-45页 |
第三章 小麦品系W014204成株抗叶锈病基因的QTL作图 | 第45-57页 |
1 材料与方法 | 第45-50页 |
1.1 试验材料 | 第45-47页 |
1.1.1 植物材料 | 第45页 |
1.1.2 菌种材料 | 第45页 |
1.1.3 主要试剂 | 第45-47页 |
1.1.4 主要仪器设备 | 第47页 |
1.2 试验方法 | 第47-50页 |
1.2.1 菌种纯化与扩繁 | 第47页 |
1.2.2 温室苗期抗病性鉴定 | 第47页 |
1.2.3 田间种植 | 第47页 |
1.2.4 田间叶锈菌接种 | 第47-48页 |
1.2.5 成株期抗叶锈性鉴定 | 第48页 |
1.2.6 小麦基因组DNA的提取 | 第48页 |
1.2.7 DNA浓度测定 | 第48页 |
1.2.8 抗感池建立 | 第48-49页 |
1.2.9 SSR标记筛选 | 第49页 |
1.2.10 PCR反应 | 第49页 |
1.2.11 变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第49页 |
1.2.12 遗传图谱的构建和QTL的检测 | 第49-50页 |
2 结果与分析 | 第50-55页 |
2.1 苗期抗病基因的鉴定 | 第50页 |
2.2 W014204/郑州5389群体田间表型分析 | 第50-52页 |
2.3 W014204/郑州5389群体的QTL分析 | 第52-55页 |
2.4 非等位QTL位点间的互作 | 第55页 |
3 讨论 | 第55-57页 |
3.1 抗叶锈病基因Lr34与Lr46的互作 | 第55-56页 |
3.2 QLr.hbu-2BS | 第56-57页 |
第四章 小麦品系平原50成株抗叶锈病基因的QTL作图 | 第57-64页 |
1 材料与方法 | 第57-59页 |
1.1 试验材料 | 第57页 |
1.1.1 植物材料 | 第57页 |
1.1.2 菌种材料 | 第57页 |
1.1.3 主要试剂 | 第57页 |
1.1.4 主要仪器设备 | 第57页 |
1.2 试验方法 | 第57-59页 |
1.2.1 菌种纯化与扩繁 | 第57-58页 |
1.2.2 田间种植 | 第58页 |
1.2.3 田间接种 | 第58页 |
1.2.4 成株期抗病性鉴定 | 第58页 |
1.2.5 小麦基因组DNA的提取 | 第58页 |
1.2.6 DNA浓度测定 | 第58页 |
1.2.7 SSR标记筛选 | 第58-59页 |
1.2.8 PCR反应 | 第59页 |
1.2.9 变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第59页 |
1.2.10 遗传图谱的构建和QTL的检测 | 第59页 |
2 结果与分析 | 第59-63页 |
2.1 群体抗叶锈性分析 | 第59-60页 |
2.2 成株抗性QTL定位 | 第60-63页 |
3 讨论 | 第63-64页 |
论文主要创新点 | 第64-65页 |
参考文献 | 第65-80页 |
附录 | 第80-89页 |
在读期间发表的学术论文 | 第89-90页 |
作者简介 | 第90-91页 |
致谢 | 第91-92页 |