| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 引言 | 第10-22页 |
| 1. 烟嘧磺隆的使用及研究进展 | 第10-12页 |
| 2. 烟嘧磺隆的残留药害情况 | 第12-14页 |
| 3. 微生物降解农药研究现状 | 第14-18页 |
| 3.1 微生物菌株的获得途径 | 第14-15页 |
| 3.2 降解农药的微生物种类 | 第15-16页 |
| 3.3 农药降解菌的降解特性 | 第16-17页 |
| 3.4 微生物降解农药的作用方式 | 第17-18页 |
| 4. 微生物降解菌剂应用的研究进展 | 第18-20页 |
| 4.1 影响微生物发酵的因素 | 第18-20页 |
| 4.2 微生物菌剂的研究现状 | 第20页 |
| 5. 本研究目的和意义 | 第20-22页 |
| 第一章 烟嘧磺隆降解菌株的分离与筛选 | 第22-28页 |
| 1.材料与方法 | 第22-24页 |
| 1.1 材料 | 第22-23页 |
| 1.1.1 供试土样 | 第22页 |
| 1.1.2 供试药品及试剂 | 第22页 |
| 1.1.3 供试培养基 | 第22页 |
| 1.1.4 仪器设备 | 第22-23页 |
| 1.2 方法 | 第23-24页 |
| 1.2.1 土壤中微生物的驯化处理 | 第23页 |
| 1.2.2 土壤中微生物的富集培养 | 第23页 |
| 1.2.3 可降解烟嘧磺隆微生物的菌株筛选 | 第23页 |
| 1.2.4 高效液相色谱检测条件 | 第23页 |
| 1.2.5 烟嘧磺隆标准曲线的制作 | 第23-24页 |
| 1.2.6 烟嘧磺隆添加回收率的测定 | 第24页 |
| 1.2.7 微生物对烟嘧磺隆的降解率测定 | 第24页 |
| 2 结果与分析 | 第24-27页 |
| 2.1 烟嘧磺隆降解菌株的筛选和分离、纯化 | 第24-25页 |
| 2.2 烟嘧磺隆标准曲线的绘制 | 第25页 |
| 2.3 烟嘧磺隆添加回收率测定结果 | 第25-26页 |
| 2.4 微生物对烟嘧磺隆的降解率测定 | 第26-27页 |
| 3 讨论 | 第27-28页 |
| 第二章 YQ14 菌株的鉴定及降解特性研究 | 第28-39页 |
| 1 材料与方法 | 第28-31页 |
| 1.1 材料 | 第28-29页 |
| 1.1.1 供试菌株 | 第28页 |
| 1.1.2 供试试剂 | 第28页 |
| 1.1.3 供试仪器 | 第28页 |
| 1.1.4 供试培养基 | 第28-29页 |
| 1.2 方法 | 第29-31页 |
| 1.2.1 菌种生理生化鉴定 | 第29页 |
| 1.2.2 细菌 16S rDNA序列分析 | 第29-30页 |
| 1.2.3 YQ14 菌株对烟嘧磺隆的降解曲线测定 | 第30页 |
| 1.2.4 不同培养基对YQ14 菌株降解作用的影响 | 第30页 |
| 1.2.5 不同浓度的烟嘧磺隆对YQ14 菌株降解作用的影响 | 第30页 |
| 1.2.6 不同培养温度对YQ14 菌株降解作用的影响 | 第30页 |
| 1.2.7 不同接种量对YQ14 菌株降解作用的影响 | 第30页 |
| 1.2.8 响应面法研究环境因素对YQ14 菌株降解率的影响 | 第30-31页 |
| 2 结果与分析 | 第31-37页 |
| 2.1 YQ14 菌株的生理生化测定结果 | 第31-32页 |
| 2.2 YQ14 菌株的 16S rDNA序列分析 | 第32-33页 |
| 2.3 YQ14 菌株对烟嘧磺隆降解动态学曲线 | 第33-34页 |
| 2.4 不同培养基对YQ14 降解作用的影响 | 第34页 |
| 2.5 不同烟嘧磺隆初始浓度对YQ14 降解作用的影响 | 第34-35页 |
| 2.6 温度对烟嘧磺隆降解作用的影响 | 第35页 |
| 2.7 不同接种量对YQ14 降解作用的影响 | 第35-36页 |
| 2.8 响应面法对YQ14 菌株降解烟嘧磺隆条件的优化 | 第36-37页 |
| 3 讨论 | 第37-39页 |
| 第三章 YQ14 菌株发酵条件优化 | 第39-48页 |
| 1 材料与方法 | 第39-43页 |
| 1.1 材料 | 第39-40页 |
| 1.1.1 供试菌株 | 第39页 |
| 1.1.2 供试药剂 | 第39-40页 |
| 1.1.3 供试仪器 | 第40页 |
| 1.1.4 供试培养基 | 第40页 |
| 1.2 方法 | 第40-43页 |
| 1.2.1 芽胞产率及活菌数测定 | 第40页 |
| 1.2.2 LB种子液培养 | 第40页 |
| 1.2.3 培养基的单因素筛选试验 | 第40-41页 |
| 1.2.4 碳源 | 第41页 |
| 1.2.5 氮源 | 第41页 |
| 1.2.6 无机盐的筛选 | 第41页 |
| 1.2.7 培养基浓度正交试验设计 | 第41-42页 |
| 1.2.8 发酵培养条件正交试验 | 第42-43页 |
| 2 结果与分析 | 第43-47页 |
| 2.1 碳源对芽胞产率的影响 | 第43-44页 |
| 2.2 氮源对芽胞产率的影响 | 第44页 |
| 2.3 无机盐对芽胞产率的影响 | 第44-45页 |
| 2.4 培养浓度正交试验 | 第45-46页 |
| 2.5 培养条件正交试验 | 第46-47页 |
| 3. 讨论 | 第47-48页 |
| 第四章 YQ14 菌株菌剂的制备 | 第48-53页 |
| 1. 材料与方法 | 第48-50页 |
| 1.1 材料 | 第48-49页 |
| 1.1.1 供试菌种 | 第48页 |
| 1.1.2 供试小麦品种 | 第48页 |
| 1.1.3 供试药品 | 第48页 |
| 1.1.4 供试仪器 | 第48页 |
| 1.1.5 供试培养基 | 第48-49页 |
| 1.2 方法 | 第49-50页 |
| 1.2.1 LB种子液培养 | 第49页 |
| 1.2.2 发酵培养 | 第49页 |
| 1.2.3 发酵液的载体吸附 | 第49页 |
| 1.2.4 菌剂含菌量的检测 | 第49页 |
| 1.2.5 小杯法试验处理设计 | 第49-50页 |
| 2 结果与分析 | 第50-52页 |
| 2.1 菌剂活菌量测定 | 第50页 |
| 2.2 菌剂室内小杯法降解效果验证 | 第50-52页 |
| 3 讨论 | 第52-53页 |
| 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-60页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第60-61页 |
| 作者简历 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
