| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 目录 | 第10-12页 |
| 插图和附表页清单 | 第12-13页 |
| 第一章 研究导论 | 第13-23页 |
| 第一节 冬眠概述 | 第13-19页 |
| 1.1.1 动物的异温性 | 第13-14页 |
| 1.1.2 冬眠的定义及特点 | 第14-15页 |
| 1.1.3 分子水平的适应性变化 | 第15-16页 |
| 1.1.4 能量代谢的适应性变化 | 第16-17页 |
| 1.1.5 冬眠的应用 | 第17-19页 |
| 第二节 蝙蝠概述 | 第19-21页 |
| 1.2.1 蝙蝠及其分类学概况 | 第19-20页 |
| 1.2.2 蝙蝠冬眠相关研究概况 | 第20-21页 |
| 第三节 本论文的研究目的 | 第21-23页 |
| 第二章 CPS1在蝙蝠冬眠中的适应性变化 | 第23-55页 |
| 第一节 引言 | 第23-26页 |
| 2.1.1 尿素循环及其在冬眠中的研究现状 | 第23-24页 |
| 2.1.2 氨甲酰磷酸合成酶(CPS1)简介 | 第24-25页 |
| 2.1.3 大足鼠耳蝠(Myotis ricketti)简介 | 第25-26页 |
| 第二节 材料与方法 | 第26-32页 |
| 2.2.1 动物组织样品的获取 | 第26-27页 |
| 2.2.2 蛋白质免疫印迹 | 第27-28页 |
| 2.2.3 CPS1及OTC的酶活性测定 | 第28-30页 |
| 2.2.4 免疫共沉淀 | 第30-31页 |
| 2.2.5 质谱鉴定样品制备 | 第31-32页 |
| 第三节 结果 | 第32-51页 |
| 2.3.1 CPS1及OTC在冬眠大足鼠耳蝠肝脏中的单位组织活性水平 | 第32-35页 |
| 2.3.2 CPS1及OTC在冬眠大足鼠耳蝠肝脏中的蛋白表达水平 | 第35-38页 |
| 2.3.3 CPS1及OTC在冬眠大足鼠耳蝠肝脏中的单位酶活性水平 | 第38-41页 |
| 2.3.4 冬眠时期大足鼠耳蝠CPS1的免疫沉淀实验及质谱分析 | 第41-51页 |
| 第四节 讨论 | 第51-55页 |
| 2.4.1 CPS1及OTC在冬眠大足鼠耳蝠肝脏中的适应性变化 | 第51-52页 |
| 2.4.2 冬眠大足鼠耳蝠肝脏中与CPS1相互作用的蛋白分析 | 第52-55页 |
| 第三章 CPS1与AGMAT的相互作用研究 | 第55-72页 |
| 第一节 引言 | 第55-57页 |
| 第二节 材料与方法 | 第57-60页 |
| 3.2.1 动物组织样品的获取 | 第57页 |
| 3.2.2 免疫共沉淀及蛋白质免疫印迹 | 第57-58页 |
| 3.2.3 免疫组织化学实验 | 第58-60页 |
| 第三节 结果 | 第60-69页 |
| 3.3.1 CPS1与AGMAT在小鼠肝脏中的免疫共沉淀 | 第60-61页 |
| 3.3.2 大足鼠耳蝠肝脏中AGMAT的表达及其与CPS1的免疫共沉淀 | 第61-63页 |
| 3.3.3 CPS1与AGMAT在小鼠及大足鼠耳蝠肝脏中的免疫荧光及FRET检测 | 第63-69页 |
| 第四节 讨论 | 第69-72页 |
| 3.4.1 小鼠肝脏中CPS1与AGMAT的相互作用情况 | 第69页 |
| 3.4.2 大足鼠耳蝠肝脏中CPS1与AGMAT的相互作用情况 | 第69-72页 |
| 第四章 结论与展望 | 第72-75页 |
| 附录 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-91页 |
| 后记 | 第91页 |
