| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 研究现状、成果 | 第12-13页 |
| 研究目的、方法 | 第13-15页 |
| 一、胃癌组织中miRNA-106b-25的表达 | 第15-32页 |
| 1.1 对象和方法 | 第15-19页 |
| 1.1.1 对象 | 第15页 |
| 1.1.2 材料与试剂 | 第15-16页 |
| 1.1.3 溶液配制 | 第16页 |
| 1.1.4 主要仪器 | 第16页 |
| 1.1.5 实验方法 | 第16-19页 |
| 1.1.6 统计学处理 | 第19页 |
| 1.2 结果 | 第19-30页 |
| 1.2.1 胃癌组织与其癌旁正常胃粘膜组织中miRNA-106b-25的表达差异 | 第19-20页 |
| 1.2.2 胃癌组织miRNA-106b-25的表达与临床病理特征的关系 | 第20-30页 |
| 1.3 讨论 | 第30-31页 |
| 1.4 小结 | 第31-32页 |
| 二、miR-106b-25在胃癌细胞系中表达的研究 | 第32-39页 |
| 2.1 对象和方法 | 第32-34页 |
| 2.1.1 细胞系 | 第32页 |
| 2.1.2 相关试剂与材料 | 第32页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第32页 |
| 2.1.4 实验方法 | 第32-34页 |
| 2.1.5 统计学处理 | 第34页 |
| 2.2 结果 | 第34-36页 |
| 2.2.1 胃癌细胞系中miRNA-106b-25的表达 | 第34页 |
| 2.2.2 瞬时转染反义抑制剂筛选降表达效果最佳的胃癌细胞系 | 第34-36页 |
| 2.3 讨论 | 第36-38页 |
| 2.4 小结 | 第38-39页 |
| 三、反义抑制miR-106b-25对胃癌细胞生物学行为的影响 | 第39-51页 |
| 3.1 对象和方法 | 第39-43页 |
| 3.1.1 对象 | 第39页 |
| 3.1.2 方法 | 第39-43页 |
| 3.1.3 统计学处理 | 第43页 |
| 3.2 结果 | 第43-49页 |
| 3.2.1 划痕实验观察转染后细胞迁移能力的变化 | 第43-44页 |
| 3.2.2 MTT（噻唑兰比色分析）检测转染抑制效果 | 第44-45页 |
| 3.2.3 细胞生长计数 | 第45-46页 |
| 3.2.4 Transwell实验检测细胞侵袭能力 | 第46-47页 |
| 3.2.5 流式细胞术检测细胞周期 | 第47-48页 |
| 3.2.6 流式细胞术检测细胞凋亡 | 第48-49页 |
| 3.3 讨论 | 第49-50页 |
| 3.4 小结 | 第50-51页 |
| 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-56页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第56-57页 |
| 附录 | 第57-59页 |
| 综述 microRNA-106b-25在胃癌中的研究进展 | 第59-71页 |
| 综述参考文献 | 第66-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
