摘要 | 第5-6页 |
ABSTRACT | 第6页 |
1 引言 | 第10-22页 |
1.1 榆叶梅研究现状 | 第10-11页 |
1.1.1 榆叶梅栽培繁殖研究现状 | 第10页 |
1.1.2 榆叶梅生理方面的研究 | 第10-11页 |
1.2 榆叶梅系统学相关研究进展 | 第11-14页 |
1.2.1 蔷薇科李亚科属的分类学讨论 | 第11-13页 |
1.2.2 中国桃属植物按广义李属划分法的系统学定位研究进展 | 第13-14页 |
1.2.3 榆叶梅系统学定位 | 第14页 |
1.3 榆叶梅细胞学研究进展 | 第14-16页 |
1.3.1 李属植物染色体核型研究进展 | 第14-15页 |
1.3.2 榆叶梅染色体的研究 | 第15-16页 |
1.4 植物分子系统学常用的DNA序列研究进展 | 第16-20页 |
1.4.1 cpDNA序列在系统学研究中的应用 | 第16-18页 |
1.4.2 核基因ITS序列在系统学研究中的应用 | 第18页 |
1.4.3 低拷贝核基因序列在植物系统学应用的研究进展 | 第18-19页 |
1.4.4 多序列联合分析在植物系统学中的应用 | 第19-20页 |
1.5 本研究的目的意义、内容及技术路线 | 第20-22页 |
1.5.1 研究目的及意义 | 第20页 |
1.5.2 研究内容及技术路线 | 第20-22页 |
2 榆叶梅染色体制片技术研究 | 第22-28页 |
2.1 材料与方法 | 第22-23页 |
2.1.1 试验材料 | 第22页 |
2.1.2 试验方法 | 第22-23页 |
2.2 结果与分析 | 第23-26页 |
2.2.1 取材对染色体制片效果的影响 | 第23-24页 |
2.2.2 预处理对染色体制片效果的影响 | 第24页 |
2.2.3 解离处理对染色体分散层度的影响 | 第24-25页 |
2.2.4 染色时间对染色效果的影响 | 第25-26页 |
2.3 讨论 | 第26-28页 |
3 榆叶梅及其部分近缘种的染色体核型分析 | 第28-40页 |
3.1 材料与方法 | 第28-30页 |
3.1.1 材料 | 第28-29页 |
3.1.2 方法 | 第29-30页 |
3.2 结果与分析 | 第30-36页 |
3.2.1 五份榆叶梅材料的核型分析 | 第30-33页 |
3.2.2 四份近缘种材料的核型分析 | 第33-36页 |
3.3 讨论 | 第36-40页 |
4 基于单拷贝核基因RPB2、Leafy序列的榆叶梅及其近缘种的分子系统发育分析 | 第40-68页 |
4.1 实验材料 | 第41-43页 |
4.1.1 植物材料 | 第41-42页 |
4.1.2 试剂材料 | 第42-43页 |
4.2 实验方法 | 第43-50页 |
4.2.1 基因组DNA的提取与检测 | 第43-44页 |
4.2.2 目标序列PCR扩增 | 第44-48页 |
4.2.3 扩增片段的回收 | 第48-49页 |
4.2.4 目标片段PCR产物与克隆载体的连接 | 第49页 |
4.2.5 重组质粒转化 | 第49页 |
4.2.6 克隆鉴定与测序 | 第49-50页 |
4.2.7 序列比对与系统发育分析 | 第50页 |
4.3 结果与分析 | 第50-63页 |
4.3.1 序列特征 | 第50-51页 |
4.3.2 系统发育分析 | 第51-63页 |
4.4 讨论 | 第63-68页 |
4.4.1 中国桃属内物种间的亲缘关系和分类划分的讨论 | 第64-65页 |
4.4.2 关于榆叶梅品种‘紫烟’的形成 | 第65页 |
4.4.3 广义李属(Prunus.s.1)范围内榆叶梅近缘种亲缘关系及分类讨论 | 第65-66页 |
4.4.4 结论以及研究展望 | 第66-68页 |
参考文献 | 第68-74页 |
个人简介 | 第74-75页 |
导师简介 | 第75-76页 |
致谢 | 第76页 |