| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 主要符号与缩写 | 第11-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-54页 |
| 1 生物分子检测的研究进展 | 第13-26页 |
| 1.1 细胞内生物分子的检测意义 | 第13-15页 |
| 1.2 细胞内生物分子的荧光检测方法 | 第15-26页 |
| 1.2.1 无信号放大的检测方法 | 第15-17页 |
| 1.2.2 信号放大的检测方法 | 第17-26页 |
| 2 微流控系统用于单细胞组分的检测 | 第26-30页 |
| 2.1 单细胞检测的重要性 | 第26页 |
| 2.2 基于微流控系统的单细胞的检测 | 第26-30页 |
| 3 细胞膜蛋白的单分子检测 | 第30-42页 |
| 3.1 单分子检测的重要性 | 第30页 |
| 3.2 细胞膜蛋白检测的重要性 | 第30-31页 |
| 3.3 细胞膜蛋白的单分子检测方法 | 第31-42页 |
| 3.3.1 目前细胞膜蛋白的检测方法 | 第31-35页 |
| 3.3.2 细胞膜蛋白的单分子成像技术 | 第35-42页 |
| 4 本论文研究方法 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-54页 |
| 第二章 基于微流控系统的单个类神经元细胞内K~+, Na~+, Mg~(2+), Ca~(2+) 的同时定量检测 | 第54-80页 |
| 1 引言 | 第54-56页 |
| 2 实验部分 | 第56-61页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第56-58页 |
| 2.2 样品的预处理 | 第58-59页 |
| 2.3 基于微流控芯片的K~+，Na~+，Mg~(2+)，Ca~(2+) 的测定 | 第59-60页 |
| 2.4 阿尔兹海默症模型 | 第60页 |
| 2.5 MTT实验 | 第60页 |
| 2.6 凋亡验证实验 | 第60-61页 |
| 2.7 Na~+/K~+-ATPase活性 | 第61页 |
| 3 结果与讨论 | 第61-72页 |
| 3.1 三种荧光探针的相关表征 | 第61-63页 |
| 3.2 基于微流控系统检测K~+，Na~+，Mg~(2+)，Ca~(2+) | 第63-65页 |
| 3.2.1 标准电泳谱图 | 第63-64页 |
| 3.2.2 分析方法性能 | 第64-65页 |
| 3.3 单个PC-12 细胞内K~+，Na~+，Mg~(2+)，Ca~(2+) 同时检测 | 第65-66页 |
| 3.4 离子通道激活剂/拮抗剂刺激的PC-12 细胞中四种离子浓度变化分析 | 第66-68页 |
| 3.5 Aβ_(25-35)诱导的单个PC-12 细胞内K~+，Na~+，Mg~(2+)，Ca~(2+) 的浓度变化及分析 | 第68-72页 |
| 3.5.1 Aβ_(25-35)诱导PC-12 细胞建立阿尔兹海默症模型 | 第68-69页 |
| 3.5.2 Aβ_(25-35)诱导的单个PC-12 细胞内K~+，Na~+，Mg~(2+)，Ca~(2+) 的同时定量检测 | 第69-72页 |
| 4 总结 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-80页 |
| 第三章 基于适配体和滚环扩增反应的信号放大进行膜蛋白的单分子检测 | 第80-97页 |
| 1 引言 | 第80-82页 |
| 2 实验部分 | 第82-84页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第82-83页 |
| 2.2 细胞培养 | 第83页 |
| 2.3 滚环扩增反应 | 第83-84页 |
| 2.4 荧光光谱检测 | 第84页 |
| 2.5 全内反射荧光成像及图像的处理 | 第84页 |
| 3 结果与讨论 | 第84-93页 |
| 3.1 滚环扩增反应机理 | 第84-85页 |
| 3.2 方案可行性验证 | 第85-86页 |
| 3.3 特异性实验 | 第86-87页 |
| 3.4 实验反应条件优化 | 第87-90页 |
| 3.4.1 线形DNA环化过程条件优化 | 第87-88页 |
| 3.4.2 滚环扩增反应过程条件优化 | 第88-90页 |
| 3.5 细胞毒性实验 | 第90-91页 |
| 3.6 细胞的荧光共聚焦成像 | 第91页 |
| 3.7 细胞的单分子成像 | 第91-93页 |
| 4 结论 | 第93页 |
| 5 全文总结 | 第93-95页 |
| 参考文献 | 第95-97页 |
| 作者发表的学术论文及参加的课题 | 第97-98页 |
| 致谢 | 第98页 |
