| 英文缩略词对照表 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-24页 |
| 第一节 酸模属药用植物研究进展 | 第13-14页 |
| 第二节 毛脉酸模研究进展 | 第14-17页 |
| 1. 毛脉酸模的资源学研究 | 第14-15页 |
| ·毛脉酸模的分类位置及生物学特性 | 第14页 |
| ·毛脉酸模的资源分布及利用 | 第14-15页 |
| 2. 毛脉酸模的研究历史及现状 | 第15-17页 |
| ·毛脉酸模的质量标准研究 | 第15页 |
| ·毛脉酸模的指纹图谱研究 | 第15页 |
| ·毛脉酸模的药理作用研究 | 第15-16页 |
| ·抗肿瘤作用 | 第15-16页 |
| ·抗菌抗病毒作用 | 第16页 |
| ·抗真菌作用 | 第16页 |
| ·其他作用 | 第16页 |
| ·毛脉酸模多糖研究进展 | 第16-17页 |
| 第三节 植物多糖的研究进展 | 第17-22页 |
| 1. 多糖概述 | 第17页 |
| 2. 植物多糖概述 | 第17-18页 |
| 3. 植物多糖提取及分离纯化 | 第18-22页 |
| ·多糖的提取 | 第18-19页 |
| ·水提醇沉法 | 第18页 |
| ·酶提取方法 | 第18页 |
| ·微波辅助提取法 | 第18-19页 |
| ·超声波提取法 | 第19页 |
| ·多糖的分离和纯化 | 第19-21页 |
| ·多糖的分离 | 第19-20页 |
| ·多糖的纯化 | 第20-21页 |
| ·多糖纯度的鉴定 | 第21页 |
| ·多糖分子量的测定 | 第21页 |
| ·多糖的单糖组分分析 | 第21-22页 |
| 第四节 多糖抗肿瘤免疫作用研究 | 第22-24页 |
| 1. 多糖的抗肿瘤免疫作用研究 | 第22-23页 |
| 2. 影响免疫系统中细胞因子的研究 | 第23-24页 |
| 第二章 毛脉酸模多糖提取分离纯化研究 | 第24-33页 |
| 第一节 毛脉酸模多糖提取分离纯化研究 | 第24-30页 |
| 1. 实验材料 | 第24-25页 |
| 2. 实验方法 | 第25-29页 |
| ·粗多糖的提取 | 第25页 |
| ·粗多糖的分离纯化 | 第25页 |
| ·多糖脱蛋白 | 第25页 |
| ·多糖脱色 | 第25页 |
| ·毛脉酸模粗多糖的含量测定 | 第25-26页 |
| ·溶液的制备 | 第26页 |
| ·制作标准曲线 | 第26页 |
| ·样品含量测定 | 第26页 |
| ·DEAE-52离子交换柱层析 | 第26-27页 |
| ·填料预处理 | 第26-27页 |
| ·装柱 | 第27页 |
| ·DEAE-52纤维素的再生 | 第27页 |
| ·上样 | 第27页 |
| ·洗脱 | 第27页 |
| ·检测 | 第27页 |
| ·洗脱液的透析 | 第27页 |
| ·凝胶柱层析 | 第27-29页 |
| ·Sephadex G-100分离原理 | 第28页 |
| ·操作步骤 | 第28-29页 |
| 3. 结果与讨论 | 第29-30页 |
| ·毛脉酸模多糖的DEAE-纤维素柱层析结果 | 第29页 |
| ·毛脉酸模多糖的Sephadex G-100凝胶柱层析结果 | 第29-30页 |
| 第二节 毛脉酸模均一多糖纯度鉴定 | 第30-32页 |
| 1. 实验材料 | 第30页 |
| 2. 实验方法 | 第30-31页 |
| ·高效液相-蒸发光检测 | 第30页 |
| ·线性关系考察 | 第30页 |
| ·仪器精密度试验 | 第30页 |
| ·稳定性试验 | 第30-31页 |
| ·重现性试验 | 第31页 |
| ·回收率试验 | 第31页 |
| 3 结果与讨论 | 第31-32页 |
| ·毛脉酸模多糖RKA、RKB高效液相-蒸发光检测结果 | 第31-32页 |
| 第三节 本章小结 | 第32-33页 |
| 1. 毛脉酸模多糖的提取分离 | 第32页 |
| 2. 毛脉酸模粗多糖含量的测定 | 第32页 |
| 3. 毛脉酸模多糖的分离纯化 | 第32-33页 |
| ·DEAE-纤维素柱层析洗脱结果 | 第32页 |
| ·Sephadex G-100凝胶柱层析洗脱结果 | 第32-33页 |
| 第三章 毛脉酸模均一多糖体外抗肿瘤活性筛选及其免疫活性研究 | 第33-50页 |
| 第一节 毛脉酸模均一多糖体外抗肿瘤活性筛选 | 第33-46页 |
| 1. 实验材料 | 第33-34页 |
| 2. 实验方法 | 第34-38页 |
| ·肿瘤细胞复苏 | 第34-35页 |
| ·肿瘤细胞的培养和传代 | 第35页 |
| ·细胞的冻存 | 第35页 |
| ·细胞计数 | 第35-36页 |
| ·CCK-8法测毛脉酸模多糖均一多糖RKA和RKB对肿瘤细胞的抑制作用 | 第36-37页 |
| ·不同浓度的多糖样品配制 | 第37页 |
| ·数据处理 | 第37页 |
| ·细胞凋亡检测 | 第37-38页 |
| 3. 结果与讨论 | 第38-46页 |
| ·RKA对HepG-2、A549、MCF-7、SW1116及T24细胞增殖的抑制作用 | 第38-42页 |
| ·RKA对HepG-2细胞增殖的抑制作用 | 第38-39页 |
| ·RKA对A549细胞增殖的抑制作用 | 第39-40页 |
| ·RKA对MCF-7细胞增殖的抑制作用 | 第40-41页 |
| ·RKA对SW1116细胞增殖的抑制作用 | 第41页 |
| ·RKA对T24细胞增殖的抑制作用 | 第41-42页 |
| ·RKB对HepG-2、A549、MCF-7、SW1116及T24细胞增殖的抑制作用 | 第42-44页 |
| ·RKB对HepG-2细胞增殖的抑制作用 | 第42-43页 |
| ·RKB对A549细胞增殖的抑制作用 | 第43页 |
| ·RKB对MCF-7细胞增殖的抑制作用 | 第43页 |
| ·RKB对SW1116细胞增殖的抑制作用 | 第43页 |
| ·RKB对T24细胞增殖的抑制作用 | 第43-44页 |
| ·毛脉酸模均多糖RKA对人肝癌细胞HepG-2、人乳癌细胞MCF-7细胞形态的影响细胞形态学观察 | 第44-46页 |
| ·流式细胞仪检测毛脉酸模多糖组分RKA对人肝癌细胞HepG-2凋亡情况 | 第46页 |
| 第二节 毛脉酸模均一多糖RKA免疫活性研究 | 第46-49页 |
| 1. 实验材料 | 第47页 |
| 2. 实验方法 | 第47-48页 |
| ·ELISA法检测细胞培养基上清液中的细胞因子的表达 | 第47-48页 |
| 3. 结果与讨论 | 第48-49页 |
| ·ELISA法检测了毛脉酸模均一多糖RKA多糖激活巨噬细胞分泌IL-2的影响 | 第48-49页 |
| 第三节 本章小结 | 第49-50页 |
| 第四章 毛脉酸模均一多糖组分分子量测定以及单糖组成研究 | 第50-59页 |
| 第一节 毛脉酸模均一多糖组分分子量测定 | 第50-53页 |
| 1. 实验材料 | 第50页 |
| 2. 实验方法 | 第50-51页 |
| ·HPLC-GPC测多糖分子量分布 | 第50-51页 |
| ·样品制备 | 第50页 |
| ·色谱条件 | 第50-51页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第51页 |
| 3. 结果与讨论 | 第51-53页 |
| ·HPLC-GPC测多糖分子量分布 | 第51-53页 |
| ·葡聚糖标准品图谱 | 第51-52页 |
| ·葡聚糖标准曲线 | 第52页 |
| ·RKA HPLC-GPC检测图谱 | 第52-53页 |
| 第二节 毛脉酸模均一多糖RKA单糖组成分析 | 第53-58页 |
| 1. 实验材料 | 第53页 |
| 2. 实验方法 | 第53-54页 |
| ·多糖全水解 | 第54页 |
| ·糖醇醋酸盐衍生化 | 第54页 |
| ·GC-MS条件 | 第54页 |
| 3. 结果与讨论 | 第54-58页 |
| ·混合糖标准品GC-MS检测图谱 | 第54-55页 |
| ·毛脉酸模均多糖RKA全水解乙酰化GC-MS图谱 | 第55-56页 |
| ·毛脉酸模均多糖RKA主要峰质谱分析 | 第56-58页 |
| 第三节 本章小结 | 第58-59页 |
| 第五章 全文总结 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-63页 |
| 致谢 | 第63-65页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第65-66页 |
| 个人简历 | 第66页 |
