| 中文摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 综述部分 | 第10-43页 |
| 第一章 分子成像 | 第10-16页 |
| ·分子成像概述 | 第10页 |
| ·分子成像分类 | 第10-12页 |
| ·分子成像应用 | 第12-16页 |
| ·基因治疗及基因治疗中的基因传递和表达成像 | 第12页 |
| ·可用于标记细胞、微生物和转基因动物的成像 | 第12-13页 |
| ·揭示机体的生理病理改变过程 | 第13页 |
| ·小动物成像研究 | 第13-16页 |
| 第二章 荧光分子成像 | 第16-28页 |
| ·荧光分子成像技术 | 第17-19页 |
| ·荧光分子成像机制 | 第17-18页 |
| ·荧光分子探针 | 第18-19页 |
| ·荧光分子成像技术 | 第19页 |
| ·肿瘤组织中的荧光分子成像 | 第19-22页 |
| ·荧光分子成像与肿瘤诊断 | 第20-21页 |
| ·荧光分子成像与肿瘤治疗 | 第21-22页 |
| ·荧光分子成像与肿瘤药物开发 | 第22页 |
| ·整合素与肿瘤荧光分子成像 | 第22-28页 |
| ·整合素与肿瘤血管新生 | 第22-24页 |
| ·整合素的基本结构 | 第24-26页 |
| ·RGD环肽靶向整合素在肿瘤荧光分子成像中的应用研究 | 第26-28页 |
| 第三章 NO与肿瘤 | 第28-36页 |
| ·NO介绍 | 第28页 |
| ·NO的体内合成 | 第28-30页 |
| ·NO体内作用机制 | 第30-32页 |
| ·NO的cGMP途径 | 第30页 |
| ·NO的硝酰化和S-亚硝酰化 | 第30-31页 |
| ·NO参与细胞凋亡 | 第31-32页 |
| ·NO与肿瘤的发生、发展和迁移 | 第32-34页 |
| ·NO对肿瘤具有双重作用 | 第32-33页 |
| ·NO与肿瘤血管新生 | 第33-34页 |
| ·NO与肿瘤转移 | 第34页 |
| ·NO的检测 | 第34-36页 |
| 小结 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-43页 |
| 实验部分 | 第43-64页 |
| 第一章 实验仪器和材料 | 第43-44页 |
| ·实验仪器 | 第43页 |
| ·实验材料 | 第43-44页 |
| ·化学合成材料 | 第43页 |
| ·细胞株培养及实验材料 | 第43-44页 |
| ·实验动物和肿瘤模型 | 第44页 |
| 第二章 实验步骤 | 第44-52页 |
| ·荧光化合物HMPB的合成 | 第44-46页 |
| ·cyclo-RGDfC的合成 | 第46页 |
| ·cyclo-RGDfC-HMPB和cyclo-RGDfC-HMPB-Cu的制备 | 第46页 |
| ·NO的制备 | 第46-47页 |
| ·RGDfC、HMPB和RGDfC-HMPB的化学表征 | 第47页 |
| ·HMPB与活性巯基反应性质 | 第47页 |
| ·荧光光谱测定 | 第47-48页 |
| ·细胞整合素受体亲和性实验 | 第48页 |
| ·检测LPS刺激Raw264.7细胞产生的NO | 第48-49页 |
| ·生物体内分布实验 | 第49-50页 |
| ·4T1小鼠乳腺癌模型和S180小鼠肉瘤模型的构建 | 第49页 |
| ·探针注射与组织切片的荧光成像 | 第49-50页 |
| ·肿瘤中NO检测 | 第50-52页 |
| ·RGDfC-HMPB-Cu配合物用于检测4T1荷瘤小鼠中各组织NO变化 | 第50页 |
| ·NO检测试剂盒检测4T1荷瘤小鼠肿瘤组织NO变化 | 第50-52页 |
| 第三章 实验结果 | 第52-61页 |
| ·HMPB的表征 | 第52页 |
| ·RGDfC、HMPB和RGDfC-HMPB的化学表征 | 第52-53页 |
| ·HMPB与活性巯基反应性质 | 第53-54页 |
| ·荧光光谱测定 | 第54-55页 |
| ·细胞整合素受体亲和性实验 | 第55-56页 |
| ·检测LPS刺激Raw264.7细胞产生的NO | 第56-57页 |
| ·生物体内分布实验 | 第57-59页 |
| ·RGDfC-HMPB在4T1和S180荷瘤小鼠中的生物分布 | 第57-58页 |
| ·4T1、S180荷瘤小鼠肿瘤切片观察结果 | 第58-59页 |
| ·肿瘤中NO检测 | 第59-61页 |
| 小结 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
