| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-23页 |
| ·坎利酮及其衍生产物的药理性质及用途 | 第12-13页 |
| ·甾体化合物的微生物转化 | 第13-14页 |
| ·微生物P450 酶系催化甾体化合物羟基化反应 | 第14-21页 |
| ·甾体化合物的微生物转化11α-羟基化 | 第14-17页 |
| ·甾体化合物的微生物转化羟基化相关技术 | 第17-21页 |
| ·本课题研究的目的、意义和主要内容 | 第21-23页 |
| ·本课题研究的目的和意义 | 第21页 |
| ·本课题研究的主要内容 | 第21-23页 |
| 第二章 坎利酮的微生物转化11α羟基化及其产物的表征 | 第23-35页 |
| ·引言 | 第23页 |
| ·材料与方法 | 第23-26页 |
| ·实验材料 | 第23-25页 |
| ·实验方法 | 第25-26页 |
| ·结果与讨论 | 第26-34页 |
| ·菌落及孢子的观察结果 | 第26-27页 |
| ·坎利酮的微生物转化结果 | 第27-28页 |
| ·坎利酮衍生产物在滤饼和发酵液中的分布情况 | 第28页 |
| ·坎利酮与其衍生产物的HPLC-MS 谱比较 | 第28-29页 |
| ·坎利酮衍生产物的纯品制备及纯度检测结果 | 第29-30页 |
| ·坎利酮衍生产物的结构确认和表征 | 第30-34页 |
| ·本章小结 | 第34-35页 |
| 第三章 赭曲霉 NG0216 转化坎利酮11α羟基化工艺优化 | 第35-58页 |
| ·引言 | 第35页 |
| ·材料与方法 | 第35-37页 |
| ·实验材料 | 第35-37页 |
| ·实验方法 | 第37页 |
| ·结果与讨论 | 第37-56页 |
| ·孢子悬浮液中孢子浓度的确定 | 第37-38页 |
| ·转化培养基的组成对转化的影响 | 第38-45页 |
| ·培养及转化条件对转化的影响 | 第45-47页 |
| ·底物坎利酮对转化的影响 | 第47-49页 |
| ·摇瓶中优化的转化条件确定 | 第49-51页 |
| ·最佳条件下坎利酮的转化 | 第51-52页 |
| ·高浓度坎利酮的转化 | 第52-53页 |
| ·赭曲霉NG0216 转化坎利酮11α-羟基化工艺的放大实验 | 第53-56页 |
| ·本章小结 | 第56-58页 |
| 第四章 固定化细胞转化坎利酮11α-羟基化的初步研究 | 第58-65页 |
| ·引言 | 第58页 |
| ·材料与方法 | 第58-60页 |
| ·实验材料 | 第58-59页 |
| ·实验方法 | 第59-60页 |
| ·结果与讨论 | 第60-64页 |
| ·固定化材料的选择 | 第60-61页 |
| ·固定化条件的确定 | 第61-62页 |
| ·温度对转化的影响 | 第62页 |
| ·pH 对转化的影响 | 第62-63页 |
| ·底物浓度对转化的影响 | 第63页 |
| ·初步优化条件下的转化 | 第63-64页 |
| ·本章小结 | 第64-65页 |
| 第五章 11α-羟基化坎利酮分离纯化及理化性质初步研究 | 第65-75页 |
| ·引言 | 第65页 |
| ·材料与方法 | 第65-68页 |
| ·实验材料 | 第65-66页 |
| ·实验方法 | 第66-68页 |
| ·结果与讨论 | 第68-74页 |
| ·提取条件的确定 | 第68-70页 |
| ·11α-羟基化坎利酮的重结晶纯化 | 第70-73页 |
| ·11α-羟基化坎利酮精品的理化性质初步研究 | 第73-74页 |
| ·本章小结 | 第74-75页 |
| 第六章 结论与展望 | 第75-78页 |
| ·结论 | 第75-76页 |
| ·展望 | 第76-78页 |
| 参考文献 | 第78-86页 |
| 附录Ⅰ 11α-羟基化坎利酮的 IR 谱 | 第86-87页 |
| 附录Ⅱ 11α-羟基化坎利酮的~(13)C-NMR 谱 | 第87-88页 |
| 附录Ⅲ 11α-羟基化坎利酮的~1H-NMR 谱 | 第88-89页 |
| 成果 | 第89-90页 |
| 致谢 | 第90页 |
