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基于胚胎干细胞定向诱导神经分化模型评价bFGF对神经发育作用的影响

摘要第1-5页
ABSTRACT第5-7页
目录第7-10页
第一章 前言第10-20页
 1. ESC 定向诱导神经细胞的方法第10-13页
   ·拟胚体培养法(EB culture method)第11-12页
   ·共培养法(coculture method)第12页
   ·单层培养法(monoculture method)第12-13页
 2. ESC 定向分化为神经细胞模型用于神经毒理的评价第13-14页
 3. 神经特异性标记物的研究现状第14-16页
   ·巢蛋白(Nestin)第14页
   ·成对盒蛋白 6 (Paired box protein 6, Pax-6)第14-15页
   ·微管相关蛋白(Microtubule-associated protein, MAP)第15页
   ·微管蛋白(Tubulin)第15页
   ·神经丝蛋白(Neurofilament protein, NF)第15页
   ·胶质纤维酸性蛋白(Glial fibrillary acidic protein, GFAP)第15-16页
 4. bFGF 的生物学活性第16-17页
   ·bFGF 广泛的生物学活性第16页
   ·bFGF 神经诱导作用的研究进展第16-17页
 5. 研究目的及技术路线第17-20页
   ·立体依据第17-18页
   ·拟研究内容第18-19页
   ·技术路线图第19-20页
第二章 材料与方法第20-31页
 1. 实验仪器和材料第20-25页
   ·实验动物第20页
   ·细胞系第20页
   ·实验仪器第20-21页
   ·实验材料第21-22页
   ·主要试验溶液的配制第22-25页
 2. 实验方法第25-31页
   ·小鼠胚胎干细胞培养、鉴定和分化第25-26页
   ·细胞免疫荧光染色分析第26-27页
   ·CCK8 测定 bFGF 和 VPA 的细胞毒性(IC50)第27页
   ·神经细胞特异性基因表达分析第27-29页
   ·细胞总蛋白的制备和免疫印迹第29-30页
   ·碘化丙啶(propidium iodide)检测细胞凋亡第30页
   ·Hoechst 33342 检测细胞凋亡第30页
   ·细胞培养液中氧化应激蛋白的测定第30页
   ·数据统计第30-31页
第三章 实验结果第31-48页
 1 胚胎干细胞定向分化为神经细胞模型的建立第31-38页
   ·ESC 未分化的鉴定第31-32页
   ·神经诱导分化程序及结果第32-33页
   ·RA 最佳诱导浓度的确定第33-34页
   ·免疫荧光检测神经前体细胞特异性标记蛋白第34-35页
   ·免疫荧光检测神经元细胞特异性标记蛋白第35页
   ·RT-PCR 测定分化各个时期特异性标记基因第35-36页
   ·Q-PCR 检测未分化特异性标记基因的表达第36-38页
 2 不同浓度的 bFGF 对神经诱导过程的影响第38-41页
   ·形态学观察不同浓度的 bFGF 对神经诱导过程的影响第38-39页
   ·bFGF 对 ESC 来源神经细胞的毒性作用(IC50)第39页
   ·bFGF 对 ESC 分化为神经细胞过程中冠状结构的影响第39-40页
   ·验证神经细胞定向分化模型用于评价待测物神经发育毒性的有效性第40-41页
 3 不同浓度 bFGF 对胚胎干细胞来源的神经细胞的特异性标记基因和蛋白的影响第41-44页
   ·bFGF 对神经细胞特异性标记基因表达的影响第41-44页
   ·bFGF 对神经细胞特异性标记蛋白表达的影响第44页
 4 bFGF 对神经细胞分化过程中抑制凋亡和氧化应激作用第44-48页
   ·bFGF 对神经细胞分化过程中细胞凋亡率的影响第44-46页
   ·bFGF 对神经细胞分化过程中细胞凋亡的形态学观察第46页
   ·不同浓度 bFGF 对神经分化细胞培养基中氧化应激水平的影响第46-48页
第四章 讨论第48-53页
   ·胚胎干细胞定向分化神经细胞模型的建立及 bFGF 的作用第48-49页
   ·VPA 用于验证神经诱导分化模型的有效性第49页
   ·bFGF 胚胎干细胞来源神经细胞的扩增、分化的影响第49-51页
   ·毒性相关神经特异性标记物的筛选第51页
   ·bFGF 胚胎毒性与神经毒性作用的关系第51-53页
结论第53-54页
展望第54-55页
参考文献第55-64页
英文缩略词表第64-65页
攻硕期间发表论文第65-66页
bFGF 原液检验报告单第66-67页
致谢第67页

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