| 前言 | 第1-5页 |
| 中文摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-16页 |
| 引言 | 第16-18页 |
| 第1篇 文献综述 | 第18-38页 |
| 第1章 一氧化氮合酶与神经损伤 | 第18-31页 |
| 1 神经损伤后脑和脊髓神经元中 NOS 的表达变化 | 第19-24页 |
| ·中枢神经系统损伤后神经元中 NOS 的表达 | 第20页 |
| ·周围神经损伤后脑和脊髓神经元 NOS 的表达 | 第20-22页 |
| ·损伤诱导的 NOS 阳性神经元的超微结构变化 | 第22页 |
| ·神经损伤后 NOS 表达的影响因素 | 第22-24页 |
| 2. NOS 在神经损伤后发挥的作用及其机制 | 第24-28页 |
| ·NOS 表达与神经元死亡 | 第25-26页 |
| ·NOS 表达与神经保护和神经再生 | 第26-28页 |
| 3 NOS 活性的调控 | 第28-29页 |
| 4 小结 | 第29-31页 |
| 第2章 丙戊酸的神经保护机制 | 第31-38页 |
| 1 VPA 调节基因表达 | 第31-33页 |
| ·转录因子途径 | 第31-32页 |
| ·HDAC 途径 | 第32-33页 |
| 2 VPA 对激酶途径的影响 | 第33-35页 |
| ·PI3K/Akt 通路 | 第34页 |
| ·MAPKs 通路 | 第34-35页 |
| ·VPA 抑制 GSK-3β通路 | 第35页 |
| ·VPA 对 PKC 和 PKA 的作用 | 第35页 |
| 3 VPA 对离子通道的作用 | 第35-36页 |
| 4 结语 | 第36-38页 |
| 第2篇 VPA 对大鼠臂丛撕脱伤后脊髓神经元存活和再生影响的研究 | 第38-92页 |
| 第1章 前言 | 第38-39页 |
| 第2章 动物模型的建立、分组及取材 | 第39-44页 |
| 1 实验动物的来源 | 第39页 |
| 2 主要仪器和试剂 | 第39页 |
| ·主要仪器 | 第39页 |
| ·主要试剂 | 第39页 |
| 3 臂丛撕脱伤动物模型的建立 | 第39-41页 |
| 4 实验动物的分组及给药 | 第41页 |
| 5. 组织标本取材 | 第41-44页 |
| 第3章 臂丛撕脱伤后脊髓运动神经元凋亡的检测 | 第44-50页 |
| 第1节 材料与方法 | 第44-46页 |
| 1 材料 | 第44页 |
| ·主要仪器 | 第44页 |
| ·试剂 | 第44页 |
| 2 方法 | 第44-45页 |
| ·TUNEL 法测定细胞凋亡的原理 | 第44-45页 |
| ·TUNEL 法步骤 | 第45页 |
| ·结果判断和图像分析 | 第45页 |
| 3 统计学分析 | 第45-46页 |
| 第2节 实验结果 | 第46-50页 |
| 1 C5-T1 脊髓节段中运动神经元凋亡的检测结果 | 第46-50页 |
| 第4章 臂丛撕脱伤后脊髓神经元内NNOS的检测 | 第50-68页 |
| 第1节 材料与方法 | 第50-59页 |
| 1 脊髓神经元内 nNOS mRNA 的 Real-time PCR 检测 | 第50-52页 |
| ·材料 | 第50页 |
| ·方法 | 第50-52页 |
| 2 脊髓神经元内 nNOS 的 Western Blot 检测 | 第52-56页 |
| ·材料 | 第52-54页 |
| ·方法 | 第54-56页 |
| 3 脊髓神经元内 nNOS 的免疫组织化学检测 | 第56-58页 |
| ·材料 | 第56-57页 |
| ·方法 | 第57-58页 |
| 4 统计学分析 | 第58-59页 |
| 第2节 实验结果 | 第59-68页 |
| 1 脊髓神经元中 nNOS mRNA 的 Real-time PCR 检测结果 | 第59-60页 |
| 2 脊髓神经元中 nNOS 蛋白的 Western blot 检测结果 | 第60-62页 |
| 3 脊髓神经元中 nNOS 的免疫组织化学检测结果 | 第62-68页 |
| 第5章 臂丛撕脱伤后脊髓神经元中 [Ca~(2+)]i 浓度的检测 | 第68-72页 |
| 第1节 材料与方法 | 第68-70页 |
| 1 材料 | 第68页 |
| ·主要仪器 | 第68页 |
| ·主要试剂 | 第68页 |
| 2 脊髓神经元内[Ca~(2+)]i 浓度测定方法 | 第68-70页 |
| ·钙荧光指示剂 Fura-2/AM 测定细胞内[Ca~(2+)]i 浓度的原理 | 第68-69页 |
| ·脊髓神经元细胞悬液制备 | 第69页 |
| ·Ca~(2+)荧光探针 Fura-2/AM 负载 | 第69页 |
| ·Ca~(2+)荧光强度的测定 | 第69-70页 |
| 3 统计学分析 | 第70页 |
| 第2节 实验结果 | 第70-72页 |
| 1 脊髓神经元内 [Ca~(2+)]i 的检测结果 | 第70-72页 |
| 第6章 臂丛撕脱伤后脊髓神经元中 GAP-43 的检测 | 第72-78页 |
| 第1节 材料与方法 | 第72-73页 |
| 1 GAP-43 mRNA 的 Real-time PCR 检测 | 第72页 |
| ·材料 | 第72页 |
| ·方法 | 第72页 |
| 2 GAP-43 蛋白的 Western Blot 检测 | 第72-73页 |
| ·材料 | 第72-73页 |
| ·方法 | 第73页 |
| 3 统计学分析 | 第73页 |
| 第2节 实验结果 | 第73-78页 |
| 1 脊髓神经元中 GAP-43 mRNA 的 Real-time PCR 检测结果 | 第73-74页 |
| 2 脊髓神经元中 GAP-43 的 Western blot 检测结果 | 第74-78页 |
| 第7章 讨论 | 第78-92页 |
| 第1节 研究的背景、现实意义和创新性 | 第78-82页 |
| 1 臂丛根性撕脱伤的治疗现状 | 第78-79页 |
| 2 臂丛根性撕脱伤后的神经元死亡和保护 | 第79-80页 |
| 3 丙戊酸的神经保护作用和优势 | 第80-81页 |
| 4 本研究的现实意义和创新性 | 第81-82页 |
| 第2节 动物模型设计和给药的合理性分析 | 第82-83页 |
| 1 动物模型的设计 | 第82页 |
| 2 给药方式的确立 | 第82-83页 |
| 第3节 VPA 对大鼠臂丛撕脱伤后神经元的保护及机制探讨 | 第83-89页 |
| 1 VPA 对大鼠臂丛撕脱伤后神经元凋亡的影响 | 第83-84页 |
| 2 VPA 对大鼠臂丛撕脱伤后脊髓神经元 nNOS 表达的影响 | 第84-86页 |
| 3 VPA 对大鼠臂丛撕脱伤后脊髓神经元 Ca~(2+)浓度表达的影响 | 第86-88页 |
| 4 VPA 作用下神经元内 nNOS 和 Ca~(2+)关系 | 第88-89页 |
| 第4节 VPA 对大鼠臂丛撕脱伤后神经元再生的促进作用 | 第89-92页 |
| 第3篇 结论 | 第92-94页 |
| 参考文献 | 第94-114页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文及参加的科研课题 | 第114-116页 |
| 致谢 | 第116页 |
