| 中英文缩写对照 | 第1-5页 |
| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-10页 |
| 前言 | 第10-12页 |
| 第一部分 嗅鞘细胞培养、纯化、鉴定 | 第12-19页 |
| 一 材料 | 第13-14页 |
| 1. 实验动物 | 第13页 |
| 2. 实验试剂 | 第13页 |
| 3. 实验仪器 | 第13-14页 |
| 二 方法 | 第14-15页 |
| 1. OECs混合液的获取 | 第14页 |
| 2. OECs的纯化培养 | 第14页 |
| 3. OECs的标记 | 第14页 |
| 4. 间接免疫细胞化学荧光染色 | 第14-15页 |
| 5. OECs纯度统计 | 第15页 |
| 三 结果 | 第15-17页 |
| 1. 倒置显微镜下观察纯化培养的OECs | 第15页 |
| 2. 荧光显微镜下观察OECs及统计OECs的纯度 | 第15-17页 |
| 四 讨论 | 第17-19页 |
| 第二部分 硫酸卡那霉素致SD大鼠听力下降模型立 | 第19-30页 |
| 一 材料 | 第20-21页 |
| 1. 实验动物 | 第20页 |
| 2. 实验试剂 | 第20页 |
| 3. 实验仪器 | 第20-21页 |
| 二 方法 | 第21-23页 |
| 1. 实验分组 | 第21页 |
| 2. ABR检测大鼠听力阂值 | 第21页 |
| 3. 组织学观察 | 第21-23页 |
| ·耳蜗冰冻切片制备 | 第21-22页 |
| ·耳蜗切片HE染色 | 第22页 |
| ·耳蜗免疫荧光染色 | 第22页 |
| ·耳蜗基底膜铺片 | 第22-23页 |
| 4. 统计学分析 | 第23页 |
| 三 结果 | 第23-27页 |
| 1. KM提高大鼠ABR阈值 | 第23-25页 |
| 2. KM损害耳蜗结构 | 第25-26页 |
| 3. KM降低存活的SGCs密度 | 第26-27页 |
| 4. KM减少耳蜗HCs数量 | 第27页 |
| 四 讨论 | 第27-30页 |
| 第三部分 嗅鞘细胞促损伤SD大鼠螺旋神经节细胞保护和修复作用的研究 | 第30-40页 |
| 一 材料 | 第31-32页 |
| 1. 实验动物 | 第31页 |
| 2. 实验试剂 | 第31页 |
| 3. 实验仪器 | 第31-32页 |
| 二 方法 | 第32-33页 |
| 1. OECs培养、标记 | 第32页 |
| 2. KM致大鼠中重度聋模型建立 | 第32页 |
| 3. 标记的OECs移植到损伤大鼠耳蜗内 | 第32-33页 |
| 4. 统计学分析 | 第33页 |
| 三 结果 | 第33-37页 |
| 1. 荧光标记OECs观察 | 第33-34页 |
| 2. 大鼠ABR阂值的变化 | 第34-35页 |
| 3. 大鼠耳蜗底圈SGCs形态的变化 | 第35-36页 |
| 4. 大鼠耳蜗底圈SGCs密度变化 | 第36-37页 |
| 5. 耳蜗其它细胞变化 | 第37页 |
| 四 讨论 | 第37-40页 |
| 全文总结 | 第40页 |
| 本课题的创新和意义 | 第40页 |
| 展望 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-48页 |
| 主要试剂配制 | 第48-49页 |
| 综述 | 第49-55页 |
| 参考文献 | 第52-55页 |
| 附录:硕士期间发表的文章 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |