| 摘要 | 第1-4页 |
| Summary | 第4-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第8-19页 |
| 1 mRNA 差异显示技术(DDRT-PCR) | 第8-9页 |
| ·DDRT-PCR 的原理和方法 | 第8-9页 |
| ·DDRT-PCR 的优点 | 第9页 |
| ·DDRT-PCR 的缺点 | 第9页 |
| ·DDRT-PCR 的应用和前景 | 第9页 |
| 2 cDNA 代表性差异分析(cDNA-RDA) | 第9-10页 |
| ·cDNA-RDA 的原理和方法 | 第9-10页 |
| ·cDNA-RDA 的优缺点 | 第10页 |
| ·cDNA-RDA 的前景 | 第10页 |
| 3 基因表达系列分析（SAGE） | 第10-11页 |
| ·SAGE 的原理及流程 | 第10-11页 |
| ·SAGE 技术的优缺点 | 第11页 |
| 4 抑制性消减杂交技术(SSH) | 第11-16页 |
| ·SSH 的原理与方法 | 第11-12页 |
| ·SSH 的优越性和缺陷 | 第12-15页 |
| ·SSH 技术的应用进展 | 第15-16页 |
| 5 cDNA 微阵列技术 | 第16-18页 |
| ·cDNA 微阵列技术的原理与方法 | 第16-17页 |
| ·cDNA 微阵列技术的优点与局限性 | 第17-18页 |
| 6 结语 | 第18-19页 |
| 第二章 牦牛外周血单个核细胞（PBMC）抑制消减文库的构建与鉴定 | 第19-48页 |
| 1 前言 | 第19页 |
| 2 材料和方法 | 第19-33页 |
| ·材料 | 第19-22页 |
| ·方法 | 第22-33页 |
| 3 结果 | 第33-41页 |
| ·牦牛单个核细胞中总RNA 提取、mRNA 纯化及检测 | 第33页 |
| ·双链cDNA(dscDNA)合成与酶切 | 第33-34页 |
| ·接头连接效率的检测 | 第34页 |
| ·消减第二次PCR 产物 | 第34-35页 |
| ·消减效率检测 | 第35页 |
| ·消减cDNA 文库的扩增及初步鉴定 | 第35-36页 |
| ·文库质量鉴定 | 第36-37页 |
| ·牦牛单个核细胞消减杂交文库差异表达基因生物信息学分析 | 第37-41页 |
| 4 讨论 | 第41-48页 |
| ·文库构建分析 | 第41-42页 |
| ·差异基因分析 | 第42-48页 |
| 第三章 趋化因子受体4 全长基因的克隆和序列分析 | 第48-59页 |
| 1 前言 | 第48页 |
| 2 材料和方法 | 第48-52页 |
| ·试验材料 | 第48-49页 |
| ·方法 | 第49-52页 |
| 3 结果 | 第52-57页 |
| ·CXCR4 基因 PCR 扩增结果 | 第52页 |
| ·酶切及 PCR 鉴定 | 第52页 |
| ·核苷酸序列测定及分析 | 第52-57页 |
| 4 讨论 | 第57-59页 |
| 第四章 胸腺素 α 原全长基因的克隆和序列分析 | 第59-67页 |
| 1 前言 | 第59页 |
| 2 试验材料和方法 | 第59-60页 |
| ·试验材料 | 第59页 |
| ·方法 | 第59-60页 |
| 3 结果 | 第60-65页 |
| ·ProTα 基因 PCR 扩增结果 | 第60页 |
| ·酶切及 PCR 鉴定 | 第60-61页 |
| ·核苷酸序列测定 | 第61-65页 |
| 4 讨论 | 第65-67页 |
| 结论 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-76页 |
| 附录 BLAST 结果(部分) | 第76-83页 |
| 缩略词 | 第83-84页 |
| 作者简介 | 第84-85页 |
