小麦中除虫脲残留分析标准方法的研究
摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-10页 |
术语与略语表 | 第10-11页 |
1 综述 | 第11-20页 |
·农药残留分析方法研究 | 第11-12页 |
·前处理技术 | 第11页 |
·仪器分析技术 | 第11-12页 |
·除虫脲的特点 | 第12-14页 |
·理化性质及其毒性 | 第12页 |
·生产状况 | 第12-13页 |
·除虫脲的杀虫机理 | 第13页 |
·应用特点 | 第13-14页 |
·除虫脲的环境转归 | 第14-15页 |
·光化学降解 | 第14页 |
·在作物和土壤中的降解 | 第14-15页 |
·在动物体内的代谢 | 第15页 |
·除虫脲的最大残留限量 | 第15-17页 |
·除虫脲的残留分析方法现状 | 第17-20页 |
·国内关于除虫脲残留分析 | 第17-18页 |
·国外关于除虫脲残留分析 | 第18-20页 |
2 引言 | 第20-23页 |
3 材料与方法 | 第23-29页 |
·供试农药与试剂 | 第23页 |
·农药 | 第23页 |
·试剂 | 第23页 |
·试验器材 | 第23-24页 |
·主要仪器设备 | 第23页 |
·其他器材 | 第23-24页 |
·供试小麦 | 第24页 |
·除虫脲标准溶液的配制 | 第24页 |
·农药标准溶液配制 | 第24页 |
·标准工作溶液的配制 | 第24页 |
·实验质量控制 | 第24页 |
·高效液相色谱检测条件的选择及优优化 | 第24-25页 |
·除虫脲吸收光谱的测定 | 第24页 |
·不同流动相及其配比的试验 | 第24页 |
·不同柱温的影响 | 第24页 |
·标准曲线的绘制 | 第24-25页 |
·提取体系的优化试验 | 第25页 |
·原理 | 第25页 |
·提取方法的选择 | 第25页 |
·提取溶剂的选择 | 第25页 |
·提取溶剂用量的选择 | 第25页 |
·提取次数 | 第25页 |
·浓缩温度的确定 | 第25页 |
·添加回收试验 | 第25-26页 |
·方法的可靠性 | 第26-27页 |
·定性 | 第26页 |
·定量 | 第26页 |
·方法的灵敏度 | 第26页 |
·方法的准确度和精密度 | 第26-27页 |
·基质适用性实验 | 第27页 |
·方法的优越性 | 第27页 |
·除虫脲的稳定性研究 | 第27页 |
·除虫脲标准溶液的稳定性 | 第27页 |
·除虫脲在小麦提取液中的稳定性 | 第27页 |
·除虫脲在基质(小麦)中的稳定性 | 第27页 |
·实验室内准确度控制 | 第27-29页 |
4 结果与分析 | 第29-47页 |
·高效液相色谱检测条件的建立 | 第29-31页 |
·检测波长的确定 | 第29页 |
·流动相组成的确定 | 第29-30页 |
·柱温的选择 | 第30-31页 |
·标准曲线的绘制 | 第31页 |
·提取体系的建立与优化 | 第31-36页 |
·提取方法的确定 | 第31-33页 |
·提取溶剂的选择 | 第33-34页 |
·提取剂用量 | 第34页 |
·提取次数的选择 | 第34-35页 |
·浓缩温度的确定 | 第35-36页 |
·优化后建立的标准方法 | 第36页 |
·小麦中除虫脲添加回收结果 | 第36-37页 |
·残留分析方法的可靠性 | 第37-39页 |
·方法的灵敏度 | 第37页 |
·方法的准确度 | 第37-38页 |
·精密度 | 第38-39页 |
·基质适用性 | 第39-40页 |
·方法优越性 | 第40-41页 |
·稳定性实验 | 第41-47页 |
·除虫脲标准溶液的稳定性 | 第41-43页 |
·除虫脲在小麦提取液中的稳定性 | 第43-45页 |
·除虫脲在基质中的稳定性 | 第45-47页 |
5 讨论 | 第47-50页 |
·检测条件的优化 | 第47页 |
·影响除虫脲添加回收试验定量分析的因素 | 第47-48页 |
·提取溶剂 | 第47-48页 |
·提取方法和提取时间 | 第48页 |
·提取剂的用量和提取次数 | 第48页 |
·稳定性研究 | 第48-49页 |
·基质适用性 | 第49页 |
·方法的比较 | 第49-50页 |
6 结论 | 第50-52页 |
·检测方法的建立 | 第50页 |
·样品前处理 | 第50页 |
·添加回收结果及方法的灵敏度、准确度和精密度 | 第50页 |
·稳定性实验 | 第50页 |
·基质适用性实验 | 第50-51页 |
·方法的优越性 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-56页 |
致谢 | 第56-57页 |
作者简介 | 第57页 |