| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-8页 |
| 第一章 绪论 | 第8-16页 |
| ·动脉粥样硬化发病机理研究概况 | 第8-9页 |
| ·超声造影剂研究概况 | 第9-14页 |
| ·超声造影剂简介 | 第9-10页 |
| ·超声造影剂的发展 | 第10-13页 |
| ·超声造影剂的应用 | 第13-14页 |
| ·本课题的研究思路和主要内容 | 第14-16页 |
| 第二章VCAM-1 分子在细胞和动脉粥样硬化病变部位的表达 | 第16-30页 |
| ·实验材料 | 第16-18页 |
| ·主要试剂 | 第16页 |
| ·细胞 | 第16页 |
| ·引物 | 第16页 |
| ·主要溶液的配制 | 第16-18页 |
| ·主要仪器和设备 | 第18页 |
| ·实验方法 | 第18-24页 |
| ·细胞培养 | 第18-19页 |
| ·HUVEC-CS 的刺激活化 | 第19页 |
| ·细胞总RNA 的提取 | 第19-20页 |
| ·RT-PCR 检测 | 第20-22页 |
| ·流式细胞检测 | 第22页 |
| ·建立动脉硬化模型 | 第22页 |
| ·动脉标本采集 | 第22-23页 |
| ·HE 染色观察动脉形态 | 第23页 |
| ·免疫组织化学观察 | 第23-24页 |
| ·实验结果 | 第24-28页 |
| ·LPS 刺激对内皮细胞VCAM-1mRNA 表达的影响 | 第24页 |
| ·LPS 刺激对VCAM-1 分子在内皮细胞表面表达的影响 | 第24-26页 |
| ·高脂饲料诱导的动脉粥样硬化病变形态 | 第26-28页 |
| ·病变部位VCAM-1 分子的表达水平 | 第28页 |
| ·讨论 | 第28-30页 |
| 第三章 靶向PLGA 聚合物微泡的制备和表征 | 第30-43页 |
| ·实验材料 | 第30-31页 |
| ·试剂 | 第30页 |
| ·主要溶液的配制 | 第30-31页 |
| ·主要仪器和设备 | 第31页 |
| ·实验方法 | 第31-34页 |
| ·PLGA 聚合物微泡的制备 | 第31-32页 |
| ·分析PLGA 聚合物微泡的粒径 | 第32页 |
| ·PLGA 聚合物微泡的形态 | 第32页 |
| ·PLGA 聚合物微泡的内部结构 | 第32页 |
| ·制备靶向PLGA 聚合物微泡 | 第32-33页 |
| ·靶向PLGA 聚合物微泡表面连接PE-streptavidin | 第33-34页 |
| ·PE-streptavidin 标准曲线绘制 | 第33页 |
| ·微泡表面连接PE-streptavidin | 第33-34页 |
| ·实验结果 | 第34-40页 |
| ·PLGA 聚合物微泡的粒径 | 第34-35页 |
| ·PLGA 聚合物微泡的形态 | 第35-36页 |
| ·PLGA 聚合物微泡的内部结构 | 第36-37页 |
| ·PE-streptavidin 标准曲线 | 第37-38页 |
| ·微泡抗体表面覆盖率的计算 | 第38-40页 |
| ·讨论 | 第40-43页 |
| 第四章 结论与展望 | 第43-45页 |
| ·结论 | 第43页 |
| ·展望 | 第43-45页 |
| 致谢 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-51页 |
| 攻读硕士期间取得的研究成果 | 第51-52页 |
