| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 目录 | 第8-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-46页 |
| ·非水相酶催化进展 | 第13-36页 |
| ·非水相介质和非水相反应体系 | 第14-19页 |
| ·非水相介质 | 第14-16页 |
| ·非水相反应体系 | 第16-19页 |
| ·不同因素对非水相酶催化的影响 | 第19-24页 |
| ·冻干保护剂对酶构象的影响 | 第19-20页 |
| ·水对非水相酶催化的影响 | 第20-21页 |
| ·反应介质对非水相酶催化的影响 | 第21-23页 |
| ·载体对非水相酶催化的影响 | 第23-24页 |
| ·非水相酶催化反应中酶活性和催化选择性的调控 | 第24-36页 |
| ·通过酶工程方法调控 | 第25-30页 |
| ·通过底物工程方法调控 | 第30-32页 |
| ·通过介质工程方法调控 | 第32-35页 |
| ·通过其它手段调控 | 第35-36页 |
| ·离子液体中酶催化研究进展 | 第36-44页 |
| ·离子液体的结构及分类 | 第36-37页 |
| ·离子液体的特性 | 第37-38页 |
| ·离子液体的纯化与回收 | 第38-39页 |
| ·酶在离子液体中催化 | 第39-44页 |
| ·离子液体对酶催化性质的影响 | 第39-42页 |
| ·离子液体中水活的控制对酶催化的影响 | 第42-43页 |
| ·不同形式的酶在离子液体中的催化效果 | 第43-44页 |
| ·本论文的研究思路及内容 | 第44-46页 |
| 第二章 超声辅助合成离子液体 | 第46-55页 |
| ·前言 | 第46-47页 |
| ·实验材料和方法 | 第47-49页 |
| ·试剂和仪器 | 第47-48页 |
| ·方法 | 第48-49页 |
| ·[BMIM][BF_4]的检测 | 第48页 |
| ·超声两步合成法合成[BMIM][BF_4] | 第48页 |
| ·超声一锅煮法合成[BMIM][BF_4] | 第48-49页 |
| ·结果及分析 | 第49-51页 |
| ·合成产物的鉴定 | 第49页 |
| ·超声两步合成法合成[BMIM][BF_4] | 第49-50页 |
| ·超声一锅煮法合成[BMIM][BF_4] | 第50-51页 |
| ·小结 | 第51-55页 |
| 第三章 Candida antarctica lipase B在离子液体中催化乙酸香叶酯的合成 | 第55-66页 |
| ·前言 | 第55页 |
| ·实验材料和方法 | 第55-58页 |
| ·实验材料和仪器 | 第55-56页 |
| ·方法 | 第56-58页 |
| ·水活度的控制 | 第56页 |
| ·酶初始反应速率测定 | 第56-57页 |
| ·不同底物摩尔比的酶催化反应 | 第57页 |
| ·批次反应条件 | 第57页 |
| ·GC检测方法 | 第57-58页 |
| ·结果与分析 | 第58-64页 |
| ·酶在离子液体中水活控制及催化 | 第58-61页 |
| ·不同底物摩尔比的催化得率 | 第61-62页 |
| ·不同温度对反应进程的影响 | 第62-63页 |
| ·离子液体及酶的重复利用 | 第63-64页 |
| ·小结 | 第64-66页 |
| 第四章 Candida cylindracea lipase在离子液体中的催化薄荷醇的拆分 | 第66-80页 |
| ·前言 | 第66-67页 |
| ·实验材料和方法 | 第67-72页 |
| ·实验材料和仪器 | 第67-68页 |
| ·实验方法 | 第68-72页 |
| ·水活的控制 | 第68页 |
| ·同工酶的分离和制备 | 第68-69页 |
| ·酶蛋白含量测定 | 第69-71页 |
| ·酶催化反应 | 第71页 |
| ·GC检测方法 | 第71-72页 |
| ·结果与分析 | 第72-79页 |
| ·不同酰基供体对薄荷醇拆分反应的影响 | 第72-73页 |
| ·非酶促反应的反应进程 | 第73-74页 |
| ·酸酐浓度对薄荷醇拆分反应的影响 | 第74-75页 |
| ·加碱对薄荷醇拆分反应的影响 | 第75-76页 |
| ·酶量对薄荷醇拆分反应的影响 | 第76-77页 |
| ·不同水活条件下酶的催化选择性 | 第77-78页 |
| ·不同同工酶在离子液体中的催化选择性 | 第78-79页 |
| ·小结 | 第79-80页 |
| 第五章 Pseudomonas cepacia lipase在离子液体中催化烯丙酮醇拆分 | 第80-101页 |
| ·前言 | 第80-81页 |
| ·实验材料和方法 | 第81-84页 |
| ·实验材料及仪器 | 第81页 |
| ·实验方法 | 第81-84页 |
| ·水活度控制 | 第81-82页 |
| ·pH控制 | 第82页 |
| ·酶活性测定 | 第82页 |
| ·动力学参数拟合 | 第82页 |
| ·酶热稳定性测定 | 第82页 |
| ·GC分析及检测 | 第82-84页 |
| ·结果与分析 | 第84-100页 |
| ·酶在离子液体中拆分反应的动力学模型 | 第84-93页 |
| ·不同酶量下的初始反应速率 | 第84-85页 |
| ·不同摇床转速下的初始反应速率 | 第85页 |
| ·动力学模型推导 | 第85-91页 |
| ·两种不同动力学模型的拟合及比较 | 第91-93页 |
| ·酶在离子液体中催化烯丙酮醇的拆分 | 第93-100页 |
| ·不同介质对酶性质和对拆分反应的影响 | 第93-96页 |
| ·水活度对酶活性的影响 | 第96-97页 |
| ·温度对消旋烯丙酮醇拆分的影响 | 第97-98页 |
| ·pH对消旋烯丙酮醇拆分的影响 | 第98-99页 |
| ·共溶剂对消旋烯丙酮醇拆分的影响 | 第99-100页 |
| ·小结 | 第100-101页 |
| 第六章 Pseudomonas cepacia lipase不同酶形式在离子液体中的催化 | 第101-113页 |
| ·前言 | 第101-102页 |
| ·实验材料和方法 | 第102-104页 |
| ·实验材料及仪器 | 第102-103页 |
| ·实验方法 | 第103-104页 |
| ·加入脂肪酸和表面活性剂和酶共沉淀 | 第103页 |
| ·加入冻干保护剂或赋形剂和酶冻干 | 第103页 |
| ·包被微晶体酶的制备 | 第103页 |
| ·蛋白含量测定 | 第103-104页 |
| ·酶催化反应 | 第104页 |
| ·GC分析与检测 | 第104页 |
| ·结果与分析 | 第104-112页 |
| ·共沉淀处理后酶的催化效果 | 第104-107页 |
| ·表面活性剂及类似物对酶催化反应的影响 | 第104-107页 |
| ·共沉淀处理过后酶催化的适宜温度 | 第107页 |
| ·冻干酶的催化 | 第107-109页 |
| ·包被微晶体酶的催化 | 第109-111页 |
| ·冻干酶和包被微晶体酶催化反应的对比 | 第111-112页 |
| ·小结 | 第112-113页 |
| 第七章 Pseudomonas cepacia lipase与环糊精冻干后在离子液体中的催化 | 第113-122页 |
| ·前言 | 第113-114页 |
| ·实验材料和方法 | 第114-116页 |
| ·实验材料及仪器 | 第114-115页 |
| ·实验方法 | 第115-116页 |
| ·冻干酶的制备 | 第115页 |
| ·冻干酶pH的控制 | 第115页 |
| ·酶催化反应 | 第115页 |
| ·酶热稳定性 | 第115页 |
| ·GC分析和检测 | 第115-116页 |
| ·结果与分析 | 第116-121页 |
| ·不同类型的环糊精对催化的影响 | 第116-118页 |
| ·环糊精加入量对催化的影响 | 第118-119页 |
| ·pH对冻干酶活性的影响 | 第119-120页 |
| ·温度对冻干酶活性及稳定性的影响 | 第120-121页 |
| ·小结 | 第121-122页 |
| 第八章 结论与建议 | 第122-124页 |
| ·结论 | 第122-123页 |
| ·建议 | 第123-124页 |
| 参考文献 | 第124-139页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第139-140页 |
| 致谢 | 第140页 |
