| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 目录 | 第5-7页 |
| 第一部分 前言 | 第7-26页 |
| 一、DNA甲基化检测方法研究现状 | 第7-13页 |
| 1 全基因组DNA的甲基化检测方法 | 第7-9页 |
| 2 特定DNA片段的甲基化检测方法 | 第9-13页 |
| 二、真核生物DNA甲基转移酶研究进展 | 第13-16页 |
| 1 动物DNA甲基转移酶 | 第14-15页 |
| 2 植物DNA甲基转移酶 | 第15-16页 |
| 三、DNA甲基化的转录抑制机制 | 第16-19页 |
| 1 第一种机制 | 第16-17页 |
| 2 第二种机制 | 第17-18页 |
| 3 第三种机制 | 第18-19页 |
| 四、DNA甲基化与真核生物的发育调节 | 第19-23页 |
| 1 DNA甲基化与动物基因表达调节 | 第19-21页 |
| 2 DNA甲基化与植物生长发育 | 第21-23页 |
| 五、展望 | 第23-24页 |
| 六、论文的理论基础及实验设计方案 | 第24-26页 |
| 第二部分 材料与方法 | 第26-38页 |
| 一、实验材料及试剂 | 第26-27页 |
| 1 实验材料 | 第26页 |
| 2 实验试剂 | 第26页 |
| 3 实验设备 | 第26-27页 |
| 二、实验方法 | 第27-38页 |
| 1 小麦幼苗的培养与处理 | 第27页 |
| 2 细胞学观察 | 第27-28页 |
| 3 SAM处理后小麦初生根DNA甲基化水平检测 | 第28-29页 |
| 4 SAM处理后小麦初生根可溶性蛋白差异检测 | 第29-33页 |
| 5 SAM处理后小麦初生根中cycl基因表达检测 | 第33-38页 |
| 第三部分 结果与分析 | 第38-55页 |
| 一、SAM处理对小麦初生根生长的影响 | 第38-39页 |
| 1 SAM处理后小麦初生根长度变化的统计分析 | 第38-39页 |
| 2 结果分析 | 第39页 |
| 二、SAM处理对小麦初生根根尖细胞分裂相的影响 | 第39-44页 |
| 1 SAM处理后小麦初生根根尖细胞有丝分裂指数变化的统计分析 | 第39-43页 |
| 2 结果分析 | 第43-44页 |
| 三、SAM处理对小麦初生根DNA甲基化水平的检测鉴定 | 第44-46页 |
| 1 小麦初生根基因组总DNA完整性检测 | 第44-45页 |
| 2 小麦初生根DNA甲基化水平的检测鉴定 | 第45-46页 |
| 四、SAM处理对小麦初生根可溶性蛋白表达的影响 | 第46-51页 |
| 1 可溶性蛋白的SDS-PAGE电泳结果 | 第46-47页 |
| 2 可溶性蛋白的双向电泳结果 | 第47-51页 |
| 五、SAM处理对小麦初生根cyclAt基因表达的影响 | 第51-55页 |
| 1 目的片段cyclAt | 第51-53页 |
| 2 小麦初生根总RNA的电泳图 | 第53-54页 |
| 3 Northern杂交的结果 | 第54-55页 |
| 第四部分 讨论 | 第55-58页 |
| 一、外源提供的甲基供体SAM对小麦初生根基因组总DNA的影响 | 第55-56页 |
| 二、DNA甲基化对小麦初生根生长及细胞有丝分裂指数的影响 | 第56页 |
| 三、DNA甲基化对小麦初生根可溶性蛋白表达谱变化的影响 | 第56-58页 |
| 四、DNA甲基化对小麦初生根细胞周期蛋白cyclAt基因变化的影响 | 第58页 |
| 第五部分 小结与展望 | 第58-59页 |
| 一、小结 | 第58页 |
| 二、展望 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-65页 |
| 附录 | 第65-70页 |
| 附录一：缩写词一览表 | 第65-66页 |
| 附录二：图版 | 第66-69页 |
| 附录三：硕士期间所发表论文 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
