| 目录 | 第1-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Summary | 第8-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-38页 |
| 1 启动子概述 | 第10-16页 |
| 1．1 引言 | 第10页 |
| 1．2 启动子结构 | 第10-14页 |
| 1．3 启动子研究的意义 | 第14-16页 |
| 2 高等植物启动子研究进展 | 第16-26页 |
| 2．1 引言 | 第16-17页 |
| 2．2 组成型启动子 | 第17-18页 |
| 2．3 组织或器官特异性启动子 | 第18-23页 |
| 2．4 诱导型启动子 | 第23-26页 |
| 3 双生病毒启动子研究进展 | 第26-36页 |
| 3．1 引言 | 第26-27页 |
| 3．2 Mastrevirus启动子 | 第27-30页 |
| 3．3 Begomovirus启动子 | 第30-35页 |
| 3．4 其它属启动子 | 第35-36页 |
| 3．5 问题与展望 | 第36页 |
| 4 立题依据 | 第36-38页 |
| 第二章 材料与方法 | 第38-48页 |
| 1 材料 | 第38页 |
| 1．1 植物材料 | 第38页 |
| 1．2 毒源 | 第38页 |
| 1．3 菌株和质粒 | 第38页 |
| 1．4 试剂与仪器 | 第38页 |
| 1．5 实验用溶液的配制 | 第38页 |
| 2 方法 | 第38-48页 |
| 2．1 PCR技术 | 第38-39页 |
| 2．2 PCR产物纯化 | 第39-40页 |
| 2．3 DNA克隆技术 | 第40-42页 |
| 2．4 重组质粒的提取与鉴定 | 第42-44页 |
| 2．5 三亲交配法 | 第44页 |
| 2．6 植物总DNA提取(CTAB法) | 第44-45页 |
| 2．7 植物总RNA提取 | 第45页 |
| 2．8 Northern印迹分析 | 第45-48页 |
| 第三章 中国番茄黄化曲叶病毒卫星启动子的鉴定 | 第48-76页 |
| 1 材料与方法 | 第49-58页 |
| 1．1 植物总DNA的制备 | 第49页 |
| 1．2 载体构建 | 第49-54页 |
| 1．3 启动子的序列分析 | 第54页 |
| 1．4 瞬间表达 | 第54页 |
| 1．5 普通烟的转化 | 第54-55页 |
| 1．6 转基因烟草的PCR鉴定 | 第55页 |
| 1．7 Northern blot分析 | 第55-56页 |
| 1．8 GUS活性的组织化学染色 | 第56-57页 |
| 1．9 GUS荧光活性分析 | 第57-58页 |
| 2 结果与分析 | 第58-71页 |
| 2．1 卫星启动子的鉴定 | 第58-68页 |
| 2．2 TYLCCNV-Y10互补链编码蛋白对卫星启动子的调节作用 | 第68-71页 |
| 2．3 TYLCCNV-Y10 DNAβ的βC1蛋白对卫星启动子的调节作用 | 第71页 |
| 3 讨论 | 第71-76页 |
| 3．1 卫星启动子的鉴定 | 第71-73页 |
| 3．2 病毒互补链编码蛋白对卫星启动子的调节作用 | 第73-75页 |
| 3．3 βC1蛋白对卫星启动子的调节作用 | 第75-76页 |
| 第四章 中国番茄黄化曲叶病毒双向启动子的鉴定 | 第76-85页 |
| 1 材料与方法 | 第76-77页 |
| 1．1 双向启动子的克隆及序列测定 | 第76-77页 |
| 1．2 表达载体的构建 | 第77页 |
| 1．3 瞬间表达和GUS活性检测、分析 | 第77页 |
| 2 结果与分析 | 第77-82页 |
| 2．1 双向启动子的鉴定 | 第77-81页 |
| 2．2 TYLCCNV-Y10 DNAβ的βC1蛋白对双向启动子的调节作用 | 第81-82页 |
| 3 讨论 | 第82-85页 |
| 3．1 双向启动子的鉴定 | 第82-83页 |
| 3．2 βC1蛋白对双向启动子的调节作用 | 第83-85页 |
| 全文小结 | 第85-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-101页 |
| 缩略语表 | 第101-104页 |
| 附录A 常用生化及分子生物学试剂与仪器 | 第104-106页 |
| 附录B 实验用溶液及培养基配方 | 第106-109页 |
