| 引言 | 第1-18页 |
| 1 liposomes和micelles结构在食品和医药等领域中的应用 | 第10-15页 |
| 1．1 liposomes结构及其应用 | 第10-13页 |
| 1．2 micelles结构及其应用 | 第13-15页 |
| 2 类黄酮（flavonoids）的保健作用 | 第15页 |
| 3 研究的目的和意义 | 第15-16页 |
| 4 主要研究内容 | 第16-18页 |
| 4．1 （-）catechin等几种类黄酮类单体水溶性的测定 | 第16页 |
| 4．2 pH值对liposomes和micelles结构中（-）C类物质稳定性的影响 | 第16页 |
| 4．3 金属离子对liposomes和micelles结构中（-）C类物质稳定性的影响 | 第16页 |
| 4．4 PC、PE、TWEEN-20、TWEEN-80等不同原料形成的liposomes和micelles结构对（-）catechin类物质稳定性的影响 | 第16页 |
| 4．5 荷载（-）catechin物质后liposomes和micelles结构的稳定性及其荷载量 | 第16页 |
| 4．6 动物活体试验（in vitro tests） | 第16-18页 |
| 4．6．1 liposomes和micelles结构对动物血清血脂和SOD活性的影响 | 第17页 |
| 4．6．2 liposomes和micelles结构对（-）catechin在动物体内代谢动力学的影响 | 第17页 |
| 4．6．3 （-）catechin在体内脏器中的分布 | 第17-18页 |
| 材料与方法 | 第18-24页 |
| 1 材料与设备 | 第18-19页 |
| 1．1 供试药品与试剂 | 第18页 |
| 1．2 供试动物 | 第18页 |
| 1．3 主要实验设备 | 第18-19页 |
| 2 方法 | 第19-24页 |
| 2．1 （-）catechin等几种类黄酮类单体水溶性的测定方法 | 第19页 |
| 2．2 体外（in vitro）（-）catechin等几种类黄酮类单体模拟氧化样品的处理及稳定性检测方法 | 第19-20页 |
| 2．2．1 对照样的处理与检测方法 | 第19页 |
| 2．2．2 micelles样的处理与检测方法 | 第19页 |
| 2．2．3 liposomes样的处理与检测方法 | 第19-20页 |
| 2．3 有效保护率的计算方法 | 第20页 |
| 2．4 micelles结构对（-）catechin类物质荷载量的分析方法 | 第20页 |
| 2．5 动物活体试验（in vivo）方法 | 第20-24页 |
| 2．5．1 动物血清血脂及SOD的检测方法 | 第20页 |
| 2．5．2 试验分组及血液处理方法 | 第20-21页 |
| 2．5．2．1 儿茶素配置 | 第20页 |
| 2．5．2．2 试验分组处理 | 第20-21页 |
| 2．5．2．3 采血方法 | 第21页 |
| 2．5．3 （-）catechin在动物体内代谢动力学的研究方法 | 第21-22页 |
| 2．5．3．1 实验分组及血液处理与检测方法 | 第21-22页 |
| 2．5．3．2 （-）catechin动物体内代谢动力学参数计算方法 | 第22页 |
| 2．5．4 （-）catechin在动物体内脏器中分布的研究方法 | 第22-24页 |
| 结果与分析 | 第24-60页 |
| 1 儿茶素的水溶性（K（octanol-1／water）值） | 第24页 |
| 2 不同结合形式的类黄酮体外氧化稳定性 | 第24-37页 |
| 2．1 pH值的影响 | 第24-26页 |
| 2．2 Cu~（2+）对儿茶素稳定性的影响 | 第26-27页 |
| 2．3 双亲和结构（liposomes和micelles）的影响 | 第27页 |
| 2．4 儿茶素型类黄酮氧化变化的模式 | 第27-32页 |
| 2．4．1 氧化变化的速度 | 第27-30页 |
| 2．4．2 氧化产物模式 | 第30-32页 |
| 2．5 双亲和结构（liposomes和micelles）对不同K（octanol-1／water）值的儿茶素型类黄酮稳定性的影响 | 第32-33页 |
| 2．6 不同原料对构建liposomes和micelles结构的影响及其与EC稳定性的关系 | 第33-37页 |
| 3 micelles结构对（-）catechin类物质的荷载量 | 第37-41页 |
| 4 动物活体试验（in vivo tests） | 第41-60页 |
| 4．1 liposomes和micelles结构对动物血清SOD的影响 | 第41-44页 |
| 4．1．1 饲料成分对SOD活性的影响 | 第41-42页 |
| 4．1．2 使用儿茶素后对高脂饲料的影响 | 第42页 |
| 4．1．3 不同儿茶素结合形式之间的比较 | 第42-43页 |
| 4．1．4 停用儿茶素5天后各组SOD活性水平比较 | 第43-44页 |
| 4．2 liposomes和micelles结构对动物血清血脂的影响 | 第44-46页 |
| 4．2．1 饲料成分对动物血清血脂的影响 | 第44-45页 |
| 4．2．2 使用（-）C和EC后对高脂饲料的影响 | 第45页 |
| 4．2．3 （-）C和EC使用方式对血脂的影响 | 第45-46页 |
| 4．2．4 （-）C和EC在降血脂方面的差异 | 第46页 |
| 4．2．5 不同结合形式的（-）C在降血脂方面的差异 | 第46页 |
| 4．3 liposomes结构对（-）C在动物体内代谢动力学的影响 | 第46-47页 |
| 4．3．1 静脉注射组药动学参数比较 | 第46-47页 |
| 4．3．2 灌胃组药动学参数比较 | 第47页 |
| 4．3．3 生物利用度的比较 | 第47页 |
| 4．4 （-）C在动物体内脏器中的分布情况 | 第47-60页 |
| 讨论 | 第60-66页 |
| 1 关于儿茶素等类黄酮类物质的氧化机制 | 第60-61页 |
| 2 关于儿茶素等类黄酮类物质抗氧化与降血脂的机理 | 第61-63页 |
| 3 双亲和结构（liposomes和micelles）对儿茶素等类黄酮类物质的保护机理 | 第63-64页 |
| 4 liposomes结构的稳定性与靶向性 | 第64-66页 |
| 结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 作者简介 | 第79-80页 |
