主要英文缩写 | 第1-7页 |
中文摘要 | 第7-8页 |
英文摘要 | 第8-10页 |
第一篇 文献综述 | 第10-36页 |
第一章 植物细胞的氧化猝发和H_2O_2的信号转导 | 第10-24页 |
§1.1活性氧代谢 | 第10页 |
§1.2氧化猝发 | 第10-14页 |
§1.2.1氧化猝发现象及其特性 | 第10-12页 |
§1.2.2氧化猝发产生的机制 | 第12-14页 |
§1.2.3氧化猝发的生理作用 | 第14页 |
§1.3H_2O_2氧化信号转导 | 第14-17页 |
§1.3.1H_2O_2与植物的过敏反应 | 第15-16页 |
§1.3.2H_2O_2与气孔运动 | 第16-17页 |
§1.4H_2O_2与基因的表达 | 第17-18页 |
§1.5结束语 | 第18-19页 |
参考文献 | 第19-24页 |
第二章 气孔保卫细胞ABA信号转导途径 | 第24-36页 |
§2.1研究保卫细胞信号转导途径的技术 | 第24-27页 |
§2.1.1激光扫描共聚焦技术用于胞内动态荧光测量 | 第24-26页 |
§2.1.2膜片钳技术测定细胞离子通道的特性 | 第26-27页 |
§2.1.3利用转基因技术测定植物细胞内游离Ca~(2+)浓度 | 第27页 |
§2.2气孔保卫细胞ABA信号转导途径 | 第27-31页 |
§2.2.1ABA受体 | 第27-28页 |
§2.2.2信号转换 | 第28-30页 |
§2.2.3ABA对离子通道的调节 | 第30-31页 |
§2.3展望 | 第31-32页 |
参考文献 | 第32-36页 |
第二篇 实验研究 论文的选题意义及其依据 | 第36-78页 |
第三章 ABA诱导蚕豆气孔保卫细胞H_2O_2的产生 | 第38-58页 |
§3.1材料与方法 | 第39-41页 |
§3.1.1植物材料 | 第39页 |
§3.1.2表皮生物分析 | 第39页 |
§3.1.3荧光探针的导入 | 第39-40页 |
§3.1.4气孔保卫细胞的显微注射 | 第40页 |
§3.1.5激光共聚焦检测术 | 第40-41页 |
§3.1.6化学试剂 | 第41页 |
§3.2结果与分析 | 第41-51页 |
§3.2.1ABA和H_2O_2对气孔行为的影响 | 第41-45页 |
§3.2.2外源ABA诱导保卫细胞H_2O_2的产生 | 第45页 |
§3.2.3CAT和DPI对保卫细胞H_2O_2产生的影响 | 第45-50页 |
§3.2.4显微注射ABA对胞内H_2O_2的产生及气孔开度的影响 | 第50-51页 |
§3.3讨论 | 第51-54页 |
参考文献 | 第54-58页 |
第四章 H_2O_2抑制的质膜内向K+通道参与ABA信号转导过程 | 第58-69页 |
§4.1材料与方法 | 第58-60页 |
§4.1.1植物材料 | 第58页 |
§4.1.2实验溶液 | 第58-59页 |
§4.1.3保卫细胞原生质体的制备 | 第59页 |
§4.1.4原生质活力检测 | 第59页 |
§4.1.5全细胞电流的记录 | 第59页 |
§4.1.6化学试剂 | 第59-60页 |
§4.2结果与分析 | 第60-66页 |
§4.2.1保卫细胞原生质体状态 | 第60-62页 |
§4. 2. 2保卫细胞依赖电压K+电流特性 | 第62页 |
§4.2.3CAT和DPI对ABA抑制的质膜内向K+电流的影响 | 第62页 |
§4.2.4H2O2和Vc对质膜内向K~+电流的影响 | 第62-66页 |
§4.3讨论 | 第66-67页 |
参考文献 | 第67-69页 |
第五章 胞质碱化可能是H_2O_2诱导气孔关闭的一个中间成分 | 第69-78页 |
§5.1材料与方法 | 第69-70页 |
§5.1.1植物材料 | 第69页 |
§5.1.2表皮生物分析 | 第69页 |
§5.1.3荧光探针的导入 | 第69页 |
§5.1.4胞内pH的检测 | 第69-70页 |
§5.1.5化学试剂 | 第70页 |
§5.2结果与分析 | 第70-75页 |
§5.2.1胞内pH标准曲线的制作 | 第70页 |
§5.2.2保卫细胞对H_2O_2、苯甲胺和丁酸的反应 | 第70-72页 |
§5.2.3H_2O_2可诱导胞质碱化、液胞酸化 | 第72页 |
§5.2.4丁酸可逆转H_2O_2诱导的胞内pH变化 | 第72-75页 |
§5.3讨论 | 第75-76页 |
参考文献 | 第76-78页 |
结论 | 第78-79页 |
致谢 | 第79-80页 |
作者简介 | 第80页 |