| 缩略语表 | 第5-8页 |
| 中文摘要 | 第8-13页 |
| Abstract | 第13-20页 |
| 前言 | 第21-23页 |
| 文献回顾 | 第23-41页 |
| 一 缺氧与视网膜发育及早产儿视网膜病变的关系 | 第23-29页 |
| 二 小胶质细胞的特征及在视网膜血管发育和新生血管发生中的调控作用 | 第29-36页 |
| 三 Basigin的分子作用机制及其在视网膜的生物学功能 | 第36-41页 |
| 第一部分 Basigin参与小胶质细胞促进氧诱导视网膜病变新生血管形成 | 第41-54页 |
| 1 材料 | 第42-43页 |
| 1.1 实验动物 | 第42页 |
| 1.2 试剂 | 第42-43页 |
| 1.3 仪器设备 | 第43页 |
| 2 方法 | 第43-46页 |
| 2.1 氧诱导视网膜病变模型的建立 | 第43页 |
| 2.2 视网膜冰冻切片的制作及保存 | 第43-44页 |
| 2.3 冰冻切片免疫组化 | 第44页 |
| 2.4 冰冻切片免疫荧光染色 | 第44-45页 |
| 2.5 视网膜铺片及免疫荧光染色 | 第45页 |
| 2.6 Western blot检测 | 第45-46页 |
| 2.7 统计学分析 | 第46页 |
| 3 结果 | 第46-52页 |
| 3.1 视网膜Basigin蛋白的表达分布 | 第46-47页 |
| 3.2 视网膜小胶质细胞标志物IBA-1 的表达分布 | 第47-48页 |
| 3.3 Basigin与小胶质细胞在视网膜的共定位 | 第48页 |
| 3.4 视网膜HIF-1α 和Basigin蛋白表达的变化趋势 | 第48-49页 |
| 3.5 小胶质细胞在视网膜中的定位 | 第49-50页 |
| 3.6 Basigin阳性小胶质细胞在视网膜的分布 | 第50-51页 |
| 3.7 表达Basigin的其他细胞来源 | 第51-52页 |
| 4 讨论 | 第52-54页 |
| 第二部分 小胶质细胞表达Basigin-2 增强视网膜脉络膜微血管内皮细胞血管生成能力 | 第54-86页 |
| 1 材料 | 第54-57页 |
| 1.1 试剂 | 第54-55页 |
| 1.2 仪器设备 | 第55-56页 |
| 1.3 细胞来源 | 第56页 |
| 1.4 PCR引物及siRNA片段序列 | 第56-57页 |
| 2 方法 | 第57-62页 |
| 2.1 细胞培养 | 第57页 |
| 2.2 Western blot检测 | 第57-58页 |
| 2.3 实时定量-PCR | 第58-59页 |
| 2.4 细胞迁移实验 | 第59页 |
| 2.5 管腔形成实验 | 第59-60页 |
| 2.6 慢病毒荧光载体感染 | 第60页 |
| 2.7 siRNA转染 | 第60-61页 |
| 2.8 细胞因子芯片测定 | 第61-62页 |
| 2.9 统计学分析 | 第62页 |
| 3 结果 | 第62-80页 |
| 3.1 缺氧条件下小胶质细胞HIF-1α 及Basigin-2 的表达 | 第62-64页 |
| 3.2 缺氧处理后的小胶质细胞对血管内皮细胞管腔形成的影响 | 第64-67页 |
| 3.3 脂质体包裹siRNA沉默Basigin-2 的转染效率 | 第67-69页 |
| 3.4 阻断小胶质细胞Basigin-2 表达对血管内皮血管生成能力的影响 | 第69-71页 |
| 3.5 阻断Basigin-2 表达对促血管生成因子生成的影响 | 第71-72页 |
| 3.6 阻断小胶质细胞Basigin-2 表达后IGF-1 的表达变化 | 第72-74页 |
| 3.7 IGF-1 对内皮细胞管腔形成能力的影响 | 第74-75页 |
| 3.8 Basigin-2 调控IGF-1 表达的通路分析 | 第75-77页 |
| 3.9 IGF-1 增强内皮细胞管腔形成能力的分子机制 | 第77-80页 |
| 4 讨论 | 第80-86页 |
| 小结 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-97页 |
| 个人简历和研究成果 | 第97-99页 |
| 致谢 | 第99-100页 |
