| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-28页 |
| ·小麦杂种优势利用 | 第12-16页 |
| ·小麦杂种优势利用的研究概况 | 第12-13页 |
| ·小麦杂种优势利用的主要途径 | 第13-16页 |
| ·植物雄性不育机理的研究 | 第16-24页 |
| ·雄性不育的细胞学研究 | 第16-18页 |
| ·植物雄性不育败育的关键时期和主要形式 | 第16-17页 |
| ·细胞器与雄性不育 | 第17页 |
| ·雄蕊组织结构与雄性不育 | 第17-18页 |
| ·植物雄性不育的生理生化研究 | 第18-22页 |
| ·活性氧代谢与雄性不育 | 第18-19页 |
| ·营养物质与雄性不育 | 第19-20页 |
| ·能量代谢与雄性不育 | 第20-21页 |
| ·激素调控与雄性不育 | 第21-22页 |
| ·植物雄性不育的分子机理 | 第22-24页 |
| ·线粒体与雄性不育 | 第22-23页 |
| ·叶绿体与雄性不育 | 第23-24页 |
| ·定量PCR 技术 | 第24-25页 |
| ·交替氧化酶基因的研究进展 | 第25-26页 |
| ·实验的目的意义和设想 | 第26-28页 |
| 第二章 SQ-1 杀雄剂诱导小麦雄性不育性效果调查 | 第28-31页 |
| ·材料方法 | 第28-29页 |
| ·材料 | 第28页 |
| ·方法 | 第28-29页 |
| ·试材处理 | 第28页 |
| ·时期确定 | 第28页 |
| ·育性效果调查 | 第28-29页 |
| ·结果与分析 | 第29-30页 |
| ·细胞学观察 | 第29-30页 |
| ·杀雄效果 | 第29页 |
| ·取样时期 | 第29-30页 |
| ·结论 | 第30-31页 |
| 第三章 SQ-1 诱导的小麦生理型雄性不育系交替氧化酶基因(AOX1)的表达分析 | 第31-42页 |
| ·材料和方法 | 第31-32页 |
| ·材料及其处理见第二章 | 第31页 |
| ·主要试剂 | 第31-32页 |
| ·主要仪器 | 第32页 |
| ·试验中设计的引物 | 第32页 |
| ·试验设计 | 第32页 |
| ·方法 | 第32-35页 |
| ·总RNA 的提取及一链cDNA 的合成 | 第32-34页 |
| ·总RNA 的提取 | 第32-33页 |
| ·cDNA 的合成 | 第33-34页 |
| ·AOX1α 和AOX1c 基因的荧光定量分析 | 第34-35页 |
| ·引物的设计和特异性检测 | 第34页 |
| ·荧光定量 | 第34-35页 |
| ·荧光定量结果分析方法 | 第35页 |
| ·结果与分析 | 第35-40页 |
| ·总RNA 的质量和反转录一链cDNA 检测 | 第35页 |
| ·荧光定量结果 | 第35-40页 |
| ·AOX1α 基因PCR 扩增特异性确定 | 第35-36页 |
| ·AOX1α 和18S rRNA 基因标标准曲线的建立 | 第36-37页 |
| ·AOX1α 基因在小麦生理型雄性不育、遗传型雄性不育中的表达分析 | 第37-38页 |
| ·AOX1c 基因的PCR 扩增特异性确定 | 第38-39页 |
| ·AOX1c 基因标准曲线的建立 | 第39页 |
| ·AOX1c 基因在小麦生理型雄性不育系、遗传型雄性不育系中的表达分析 | 第39-40页 |
| ·讨论 | 第40-42页 |
| 第四章 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 作者简介 | 第50页 |
