| 摘要 | 第1-11页 |
| Abstract | 第11-15页 |
| 前言 | 第15-23页 |
| 第一章 亚油酸和聚苹果酸双接枝壳聚糖(LMC)及其功能化修饰衍生物的制备与表征 | 第23-42页 |
| 1 材料和仪器 | 第24-25页 |
| 2 实验方法 | 第25-30页 |
| ·亚油酸/聚苹果酸双接枝壳聚糖(LMC)的制备 | 第25-28页 |
| ·苄氧羰基B丙内酯的制备 | 第25-26页 |
| ·乳酸引发的聚苹果酸苄酯的制备 | 第26-27页 |
| ·乳酸-PMLABz的酰氯化 | 第27页 |
| ·亚油酸(Linoleic acid,LA)的酰氯化 | 第27页 |
| ·不同取代度LMC的制备 | 第27-28页 |
| ·功能化修饰的LMC衍生物的制备 | 第28-29页 |
| ·mPEG醛的制备 | 第28页 |
| ·mPEG醛的活化率 | 第28页 |
| ·PEG-LMC的制备 | 第28页 |
| ·叶酸修饰的PEG-LMC(FA-PEG-LMC)的制备 | 第28-29页 |
| ·生物素修饰的PEG-LMC(BT-PEG-LMC)的制备 | 第29页 |
| ·LMC及其衍生物的表征 | 第29-30页 |
| ·红外光谱(FTIR) | 第29页 |
| ·核磁共振(~1HNMR) | 第29页 |
| ·X射线衍射分析 | 第29页 |
| ·差示扫描量热(DSC)分析 | 第29页 |
| ·元素分析 | 第29-30页 |
| 3 结果与讨论 | 第30-39页 |
| ·LMC的制备 | 第30-33页 |
| ·苄氧羰基p丙内酯的制备 | 第30-31页 |
| ·乳酸PMLABz的制备 | 第31页 |
| ·接枝反应 | 第31-32页 |
| ·脱保护基 | 第32-33页 |
| ·功能化修饰的LMC的制备 | 第33-34页 |
| ·mPEG醛的制备 | 第33-34页 |
| ·PEG-LMC的制备 | 第34页 |
| ·LMC及其衍生物的表征 | 第34-39页 |
| ·红外光谱(FTIR) | 第34-35页 |
| ·核磁共振(~1HNMR) | 第35-37页 |
| ·X射线衍射 | 第37页 |
| ·DSC分析 | 第37-38页 |
| ·元素分析 | 第38-39页 |
| 4 小结 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-42页 |
| 第二章 LMC及其衍生物纳米粒的制备、表征及载药、释药特性 | 第42-59页 |
| 1 材料和仪器 | 第43页 |
| 2 实验方法 | 第43-45页 |
| ·高效液相色谱法(HPLC)测定紫杉醇(PTX)含量 | 第43-44页 |
| ·色谱分析条件 | 第43页 |
| ·标准曲线 | 第43-44页 |
| ·方法专属性 | 第44页 |
| ·回收率 | 第44页 |
| ·精密度 | 第44页 |
| ·空白和载PTX LMC及其衍生物纳米粒的制备 | 第44页 |
| ·纳米粒的表征 | 第44-45页 |
| ·粒径和Zeta电势 | 第44页 |
| ·透射电镜(TEM)和扫描电镜(SEM) | 第44-45页 |
| ·临界聚集浓度(CAC) | 第45页 |
| ·载药量和包封率测定 | 第45页 |
| ·载PTX LMC及其衍生物纳米粒的体外药物释放 | 第45页 |
| 3 结果与讨论 | 第45-54页 |
| ·HPLC法测定PTX含量 | 第45-47页 |
| ·标准曲线 | 第45-46页 |
| ·方法专属性 | 第46页 |
| ·回收率和精密度 | 第46-47页 |
| ·LMC及其衍生物纳米粒的制备 | 第47页 |
| ·LMC及其衍生物纳米粒的形态 | 第47-48页 |
| ·粒径和Zeta电势 | 第48-51页 |
| ·LMC及其衍生物纳米粒的CAC | 第51-52页 |
| ·载药量和包封率 | 第52-53页 |
| ·载PTX LMC及其衍生物纳米粒的体外释放 | 第53-54页 |
| 4 小结 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-59页 |
| 第三章 载紫杉醇纳米粒的抗肿瘤作用、体内外靶向性及安全性 | 第59-91页 |
| 1 试剂、动物与仪器 | 第59-60页 |
| 2 实验方法 | 第60-65页 |
| ·H22移植瘤小鼠模型的建立 | 第60页 |
| ·抑瘤试验 | 第60-61页 |
| ·细胞摄取试验 | 第61-62页 |
| ·罗丹明B标记纳米粒的制备 | 第61页 |
| ·蛋白质含量测定 | 第61页 |
| ·纳米粒浓度对细胞摄取的影响 | 第61-62页 |
| ·培育时间对细胞摄取的影响 | 第62页 |
| ·游离叶酸和生物素对细胞摄取的影响 | 第62页 |
| ·组织分布试验 | 第62-64页 |
| ·组织样品处理 | 第62-63页 |
| ·色谱分析条件 | 第63页 |
| ·方法专属性 | 第63页 |
| ·标准曲线 | 第63页 |
| ·精密度与回收率 | 第63-64页 |
| ·载药纳米粒在健康小鼠体内的组织分布 | 第64页 |
| ·载药纳米粒在H22荷瘤小鼠体内的组织分布 | 第64页 |
| ·安全性评价 | 第64-65页 |
| ·溶血试验 | 第64-65页 |
| ·急性毒性试验 | 第65页 |
| ·统计学分析 | 第65页 |
| 3 结果与讨论 | 第65-87页 |
| ·抑瘤试验 | 第65-69页 |
| ·肿瘤生长曲线 | 第65-66页 |
| ·抑瘤率 | 第66-69页 |
| ·细胞摄取试验 | 第69-74页 |
| ·罗丹明B标记纳米粒 | 第69页 |
| ·纳米粒浓度对细胞摄取的影响 | 第69-70页 |
| ·培育时间对细胞摄取的影响 | 第70-71页 |
| ·游离叶酸和游离生物素对细胞摄取的影响 | 第71-72页 |
| ·荧光显微观察 | 第72-74页 |
| ·组织分布 | 第74-86页 |
| ·HPLC测定生物样品中PTX的含量 | 第74页 |
| ·方法专属性 | 第74-76页 |
| ·标准曲线 | 第76页 |
| ·精密度和回收率 | 第76-78页 |
| ·最低检测限 | 第78页 |
| ·健康小鼠体内组织分布 | 第78-82页 |
| ·荷瘤小鼠体内组织分布 | 第82-86页 |
| ·安全性评价 | 第86-87页 |
| ·溶血 | 第86-87页 |
| ·急性毒性 | 第87页 |
| 4 小结 | 第87-88页 |
| 参考文献 | 第88-91页 |
| 总结和展望 | 第91-95页 |
| 致谢 | 第95-96页 |
| 个人简历 | 第96-97页 |
| 综述 | 第97-109页 |
| 壳聚糖及其衍生物纳米粒研究进展 | 第97-109页 |
