| 目录 | 第1-9页 |
| 中文摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-55页 |
| 1 药物载体 | 第14-16页 |
| ·纳米药物载体的种类及其制备方法 | 第14-16页 |
| ·纳米粒 | 第14页 |
| ·纳米脂质体 | 第14-15页 |
| ·固体脂质纳米粒 | 第15页 |
| ·聚合物胶束 | 第15页 |
| ·纳米磁性颗粒 | 第15-16页 |
| ·药物载体具有显著优点 | 第16页 |
| 2 生物降解天然高分子材料 | 第16-19页 |
| ·壳聚糖 | 第17页 |
| ·藻酸盐 | 第17-18页 |
| ·琼脂糖 | 第18页 |
| ·胶原及其衍生物 | 第18页 |
| ·明胶及其衍生物 | 第18-19页 |
| ·纤维蛋白 | 第19页 |
| ·丝素蛋白 | 第19页 |
| 3 酪蛋白 | 第19-25页 |
| ·酪蛋白的一级结构 | 第20-21页 |
| ·酪蛋白的嵌段共聚物模型 | 第21-22页 |
| ·酪蛋白胶束结构模型 | 第22-25页 |
| ·"套核"模型 | 第22-23页 |
| ·内部结构模型 | 第23页 |
| ·亚单元模型 | 第23-24页 |
| ·Holt的酪蛋白结构新模型 | 第24-25页 |
| 4 多肽自组装 | 第25-31页 |
| ·多肽自组装技术 | 第25-26页 |
| ·多肽自组装机理 | 第26页 |
| ·多肽自组装结构的多样性 | 第26-30页 |
| ·膜结构 | 第27页 |
| ·纳米管、纳米囊和纳米线 | 第27-28页 |
| ·纳米纤维和水凝胶 | 第28-29页 |
| ·多肽与其他分子的共组装 | 第29-30页 |
| ·影响多肽自组装的因素 | 第30-31页 |
| ·多肽自组装的应用和挑战 | 第31页 |
| 5 细胞对大分子以及纳米颗粒的跨膜吸收 | 第31-38页 |
| ·细胞的跨膜运输 | 第31-32页 |
| ·胞吞作用 | 第32-34页 |
| ·吞噬作用 | 第32-33页 |
| ·胞饮作用 | 第33-34页 |
| ·纳米粒子的跨膜吸收 | 第34-38页 |
| ·聚合物纳米粒子的细胞转运机理 | 第34-35页 |
| ·聚合物纳米粒子在细胞转运过程中的驱动力 | 第35页 |
| ·纳米粒子表面性质对跨膜吸收的影响 | 第35-38页 |
| ·细胞功能和内吞途径的关系 | 第38页 |
| 6 细胞穿膜肽 | 第38-44页 |
| ·细胞穿膜肽的发现 | 第38-39页 |
| ·细胞穿膜肽结合细胞膜的机制 | 第39-40页 |
| ·细胞穿膜肽的内化机制 | 第40-43页 |
| ·CPP通过脂质层直接入胞模式 | 第40页 |
| ·CPP通过形成某种跨膜结构发生的转导模式 | 第40-42页 |
| ·内吞介导的内化模式 | 第42-43页 |
| ·细胞穿膜肽的应用 | 第43-44页 |
| 7 本论文的研究目的、主要内容和创新之处 | 第44-48页 |
| ·本论文的研究目的 | 第44-45页 |
| ·本论文的主要内容 | 第45-46页 |
| ·本论文的创新之处 | 第46-48页 |
| 8 参考文献 | 第48-55页 |
| 第二章 酪蛋白纳米球的组装 | 第55-88页 |
| 1 研究背景 | 第55-56页 |
| 2 实验部分 | 第56-61页 |
| ·主要试剂 | 第56-57页 |
| ·细胞株 | 第57页 |
| ·主要仪器 | 第57-58页 |
| ·细胞的培养 | 第58-59页 |
| ·酪蛋白-聚丙烯酸纳米球的制备及其表征 | 第59页 |
| ·单组分酪蛋白-聚丙烯酸纳米球的制备及其表征 | 第59页 |
| ·戊二醛交联纳米球及其表征 | 第59页 |
| ·纳米球的pH稳定性 | 第59-60页 |
| ·酪蛋白纳米球的制备与表征 | 第60页 |
| ·酪蛋白纳米球负载顺铂及其释放 | 第60页 |
| ·细胞毒性实验 | 第60-61页 |
| ·罗丹明B异氰酸酯标记酪蛋白纳米球 | 第61页 |
| ·激光共聚焦显微镜观察细胞 | 第61页 |
| 3 结果与讨论 | 第61-85页 |
| ·酪蛋白的选择 | 第61-62页 |
| ·酪蛋白-聚丙烯酸纳米球的制备 | 第62-68页 |
| ·丙烯酸与酪蛋白的摩尔比对纳米球的影响 | 第62-63页 |
| ·聚合时间对纳米球的影响 | 第63-65页 |
| ·引发剂用量对纳米球的影响 | 第65-66页 |
| ·酪蛋白浓度对纳米球的影响 | 第66-67页 |
| ·反应温度对纳米球的影响 | 第67-68页 |
| ·酪蛋白-聚丙烯酸纳米球的表征 | 第68-71页 |
| ·纳米球的形貌表征 | 第68-69页 |
| ·纳米球的热稳定性 | 第69-70页 |
| ·Nanol的pH稳定性 | 第70-71页 |
| ·单组分酪蛋白-聚丙烯酸纳米球的制备 | 第71-73页 |
| ·用戊二醛交联酪蛋白-聚丙烯酸纳米球 | 第73-76页 |
| ·交联温度 | 第73-74页 |
| ·戊二醛用量 | 第74-75页 |
| ·交联时间 | 第75-76页 |
| ·纳米球经戊二醛交联后的表征 | 第76-79页 |
| ·纳米球的红外表征 | 第79-80页 |
| ·酪蛋白纳米球的形态表征 | 第80-81页 |
| ·酪蛋白纳米球负载顺铂及其释放 | 第81-82页 |
| ·体外细胞毒性实验 | 第82-84页 |
| ·酪蛋白纳米球在细胞内的分布 | 第84-85页 |
| 4 本章小结 | 第85-86页 |
| 5 参考文献 | 第86-88页 |
| 第三章 酪蛋白纳米空心球的制备与表征 | 第88-121页 |
| 1 研究背景 | 第88-90页 |
| 2 实验部分 | 第90-94页 |
| ·主要试剂 | 第90页 |
| ·细胞株 | 第90页 |
| ·主要仪器 | 第90-91页 |
| ·细胞的培养 | 第91页 |
| ·酪蛋白-聚丙烯酸纳米球的制备及其表征 | 第91页 |
| ·单组分酪蛋白-聚丙烯酸纳米球的制备及其表征 | 第91页 |
| ·用戊二醛交联纳米球及其表征 | 第91-92页 |
| ·纳米球的pH稳定性 | 第92页 |
| ·酪蛋白纳米球的制备与表征 | 第92页 |
| ·SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第92-93页 |
| ·酪蛋白纳米球负载顺铂及其释放 | 第93页 |
| ·细胞毒性实验 | 第93页 |
| ·罗丹明B异氰酸酯标记酪蛋白纳米球 | 第93页 |
| ·激光共聚焦显微镜观察细胞 | 第93-94页 |
| 3 结果与讨论 | 第94-117页 |
| ·丙酸的选择 | 第94页 |
| ·丙酸参与的酪蛋白-聚丙烯酸纳米球的制备 | 第94-102页 |
| ·丙烯酸和丙酸与酪蛋白的摩尔比对纳米球的影响 | 第94-97页 |
| ·酪蛋白浓度对纳米球的影响 | 第97-99页 |
| ·引发剂用量对纳米球的影响 | 第99-102页 |
| ·单组分酪蛋白-聚丙烯酸纳米球的制备 | 第102-104页 |
| ·纳米球经戊二醛交联后的表征 | 第104-105页 |
| ·纳米球的pH稳定性 | 第105-108页 |
| ·纳米球的红外表征 | 第108-110页 |
| ·酪蛋白纳米球的纯化及稳定性研究 | 第110-112页 |
| ·酪蛋白-聚丙烯酸纳米球的空心机理研究 | 第112-114页 |
| ·酪蛋白纳米球负载顺铂及其释放 | 第114-115页 |
| ·体外细胞毒性实验 | 第115-116页 |
| ·酪蛋白纳米球在细胞内的分布 | 第116-117页 |
| 4 本章小结 | 第117-119页 |
| 5 参考文献 | 第119-121页 |
| 第四章 酪蛋白纳米球进入细胞的机制研究 | 第121-156页 |
| 1 研究背景 | 第121-122页 |
| 2 实验部分 | 第122-128页 |
| ·主要试剂 | 第122-123页 |
| ·细胞株 | 第123页 |
| ·主要仪器 | 第123页 |
| ·细胞的培养 | 第123页 |
| ·酪蛋白纳米空心球的制备 | 第123-124页 |
| ·单组分酪蛋白纳米球的制备 | 第124页 |
| ·罗丹明B异氰酸酯或荧光胺共价标记 | 第124页 |
| ·激光共聚焦显微镜观察贴壁细胞 | 第124-125页 |
| ·激光共聚焦显微镜观察悬浮细胞 | 第125-126页 |
| ·流式细胞仪 | 第126-127页 |
| ·细胞毒性实验 | 第127页 |
| ·内涵体荧光染色 | 第127-128页 |
| ·溶酶体荧光染色 | 第128页 |
| ·细胞电镜切片的制备与表征 | 第128页 |
| 3 结果与讨论 | 第128-152页 |
| ·酪蛋白纳米球的跨膜吸收 | 第129-131页 |
| ·酪蛋白分子的跨膜吸收 | 第131-133页 |
| ·圆二色谱表征酪蛋白的结构 | 第133-135页 |
| ·低温及各种阻断试剂对细胞摄取酪蛋白纳米球的影响 | 第135-145页 |
| ·低温对细胞摄取酪蛋白纳米球的影响 | 第135-138页 |
| ·叠氮钠对细胞摄取酪蛋白纳米球的影响 | 第138-140页 |
| ·制霉菌素对细胞摄取酪蛋白纳米球的影响 | 第140-141页 |
| ·非律平对细胞摄取酪蛋白纳米球的影响 | 第141-142页 |
| ·细胞松弛素D对细胞摄取酪蛋白纳米球的影响 | 第142-144页 |
| ·诺考达唑对细胞摄取酪蛋白纳米球的影响 | 第144-145页 |
| ·低温或各种阻断试剂处理后对细胞活性的影响 | 第145-146页 |
| ·酪蛋白纳米空心球在细胞内的定位 | 第146-149页 |
| ·用FM4-64定位 | 第146-147页 |
| ·用Lyso-Tracker Red定位 | 第147-148页 |
| ·透射电镜观察酪蛋白纳米空心球在细胞内的分布 | 第148-149页 |
| ·不同温度下细胞内化酪蛋白纳米空心球 | 第149-151页 |
| ·细胞对酪蛋白纳米球内化机制的探讨 | 第151-152页 |
| 4 本章小结 | 第152-154页 |
| 5 参考文献 | 第154-156页 |
| 第五章 酪蛋白纳米球的交联及金纳米粒子负载的酪蛋白复合纳米球的制备 | 第156-190页 |
| 1 研究背景 | 第156-158页 |
| 2 实验部分 | 第158-161页 |
| ·主要试剂 | 第158页 |
| ·细胞株 | 第158页 |
| ·主要仪器 | 第158页 |
| ·细胞的培养 | 第158-159页 |
| ·酪蛋白-聚丙烯酸纳米空心球的制备 | 第159页 |
| ·戊二醛交联酪蛋白-聚丙烯酸纳米空心球 | 第159页 |
| ·硫酸钙交联酪蛋白-聚丙烯酸纳米空心球 | 第159页 |
| ·京尼平交联酪蛋白-聚丙烯酸纳米空心球 | 第159页 |
| ·转谷氨酰胺酶交联酪蛋白-聚丙烯酸纳米空心球 | 第159页 |
| ·酪蛋白纳米空心球的制备 | 第159-160页 |
| ·酪蛋白纳米球负载顺铂及其释放 | 第160页 |
| ·细胞毒性实验 | 第160页 |
| ·罗丹明B异氰酸酯标记酪蛋白纳米球 | 第160页 |
| ·激光共聚焦显微镜观察细胞 | 第160页 |
| ·戊二醛交联的酪蛋白-聚丙烯酸纳米实心球的制备 | 第160页 |
| ·负载金的酪蛋白-聚丙烯酸复合纳米球的制备及其表征 | 第160-161页 |
| 3 结果与讨论 | 第161-186页 |
| ·硫酸钙交联酪蛋白-聚丙烯酸纳米空心球 | 第161-169页 |
| ·钙盐的选择 | 第161页 |
| ·交联条件的选择 | 第161-162页 |
| ·硫酸钙交联后纳米球的pH稳定性 | 第162-164页 |
| ·硫酸钙交联后纳米球的红外表征 | 第164-165页 |
| ·经硫酸钙交联得到的酪蛋白纳米球负载顺铂及其释放 | 第165-167页 |
| ·体外细胞毒性实验 | 第167-168页 |
| ·酪蛋白纳米球在细胞内的分布 | 第168-169页 |
| ·京尼平交联酪蛋白-聚丙烯酸纳米空心球 | 第169-172页 |
| ·转谷氨酰胺酶交联酪蛋白-聚丙烯酸纳米空心球 | 第172-180页 |
| ·交联条件的选择 | 第172-177页 |
| ·转谷氨酰胺酶交联后纳米球的红外表征 | 第177-178页 |
| ·体外细胞毒性实验 | 第178-179页 |
| ·酪蛋白纳米球在细胞内的分布 | 第179-180页 |
| ·负载金的酪蛋白-聚丙烯酸复合纳米球 | 第180-186页 |
| ·酪蛋白还原氯金酸 | 第181-182页 |
| ·还原温度和时间对制备复合纳米球的影响 | 第182-184页 |
| ·氯金酸和酪蛋白的质量比对制备复合纳米球的影响 | 第184-186页 |
| 4 本章小结 | 第186-188页 |
| 5 参考文献 | 第188-190页 |
| 已发表和待发表的论文 | 第190-191页 |
| 致谢 | 第191-193页 |