| 缩略语 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 实验材料 | 第13-16页 |
| 1.1 主要试剂 | 第13-14页 |
| 1.2 实验动物 | 第14页 |
| 1.3 主要仪器 | 第14-15页 |
| 1.4 主要试剂配制 | 第15-16页 |
| 实验方法 | 第16-26页 |
| 2.1 MSCs和外泌体的提取及鉴定 | 第16页 |
| 2.2 实验分组 | 第16-17页 |
| 2.3 建立大鼠坐骨神经压榨模型 | 第17页 |
| 2.4 MSCs和外泌体给药方法 | 第17页 |
| 2.5 坐骨神经功能指数(SFI)检测 | 第17-19页 |
| 2.6 热痛潜伏期(PWTL)测定 | 第19-20页 |
| 2.7 组织取材 | 第20页 |
| 2.8 制作切片 | 第20-21页 |
| 2.9 甲苯胺蓝染色 | 第21页 |
| 2.10 免疫组化法检测大鼠坐骨神经S-100和NGF的表达 | 第21-23页 |
| 2.11 Q-PCR | 第23-25页 |
| 2.12 统计学方法分析 | 第25-26页 |
| 实验结果 | 第26-36页 |
| 3.1 大鼠术后一般状态观察 | 第26-27页 |
| 3.2 步态分析和坐骨神经功能指数(SFI ) | 第27-28页 |
| 3.3 热痛潜伏期测定 | 第28-29页 |
| 3.4 再生神经数量计数和纤维直径测量 | 第29-32页 |
| 3.5 PMP-22、VEGFA、NGFr、S100B、Akt1 和HGF m RNA表达变化 | 第32-33页 |
| 3.6 坐骨神经干S-100 和NGF免疫组织化学 | 第33-36页 |
| 讨论 | 第36-40页 |
| 结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-46页 |
| 综述 外泌体在周围神经再生中的作用 | 第46-57页 |
| 综述参考文献 | 第52-57页 |
| 个人简历 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
