| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第14-22页 |
| 1.1 青光眼视神经损伤的机制 | 第14-15页 |
| 1.2 青光眼的动物模型 | 第15-16页 |
| 1.3 自噬与青光眼性视神经损伤的研究进展 | 第16-22页 |
| 1.3.1 自噬的调控机制 | 第16-18页 |
| 1.3.2 自噬与青光眼性RGCs凋亡 | 第18-22页 |
| 1.3.2.1 视神经横断损伤模型 | 第18-19页 |
| 1.3.2.2 视网膜缺血-再灌注模型 | 第19-20页 |
| 1.3.2.3 高眼压模型 | 第20页 |
| 1.3.2.4 自噬诱导多肽Tat-beclin 1的潜在治疗价值 | 第20-22页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第22-40页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-26页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第22页 |
| 2.1.2 抗体 | 第22页 |
| 2.1.3 主要实验试剂 | 第22-24页 |
| 2.1.4 主要实验仪器 | 第24-26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-39页 |
| 2.2.1 原代视网膜神经细胞的培养 | 第26页 |
| 2.2.2 氧糖剥夺/再复氧模型的建立以及CCK-8法检测细胞活性 | 第26-27页 |
| 2.2.3 SD大鼠急性高眼压模型的建立及玻璃体腔注射 | 第27-28页 |
| 2.2.4 荧光金(Fluoro-Gold, FG)示踪检测RGCs | 第28-29页 |
| 2.2.4.1 FG逆行示踪检测RGCs手术 | 第28-29页 |
| 2.2.4.2 全视网膜平铺片和RGC计数 | 第29页 |
| 2.2.5 眼球组织切片的制备 | 第29-31页 |
| 2.2.6 苏木素-伊红染色(Hematoxylin & Eosin stain,H&E stain) | 第31-32页 |
| 2.2.7 TUNEL法检测细胞凋亡 | 第32-34页 |
| 2.2.8 视网膜组织总蛋白提取 | 第34页 |
| 2.2.9 蛋白质印迹法(Western Blot法)检测蛋白表达情况 | 第34-39页 |
| 2.2.9.1 BCA蛋白定量分析 | 第34-35页 |
| 2.2.9.2 灌胶 | 第35-36页 |
| 2.2.9.3 SDS-PAGE电泳 | 第36-37页 |
| 2.2.9.4 转膜(湿转) | 第37页 |
| 2.2.9.5 免疫反应 | 第37-38页 |
| 2.2.9.6 化学发光显影 | 第38页 |
| 2.2.9.7 膜再生 | 第38-39页 |
| 2.3 结果数据处理 | 第39-40页 |
| 第三章 实验结果 | 第40-51页 |
| 3.1 自噬诱导多肽Tat-beclin 1预处理对体外培养原代大鼠视网膜神经细胞氧糖剥夺/再复氧损伤的影响 | 第40-42页 |
| 3.2 自噬诱导多肽Tat-beclin 1对视网膜组织结构急性高眼压损伤的影响 | 第42-44页 |
| 3.3 自噬诱导多肽Tat-beclin 1对急性高眼压损伤后视网膜神经节细胞存活率的影响 | 第44-46页 |
| 3.4 自噬诱导多肽Tat-beclin 1对急性高眼压诱发视网膜细胞凋亡的影响 | 第46-47页 |
| 3.5 自噬诱导多肽Tat-beclin 1对急性高眼压损伤后视网膜组织中自噬信号通路关键蛋白表达的影响 | 第47-51页 |
| 第四章 实验讨论 | 第51-58页 |
| 4.1 自噬诱导多肽tat-beclin 1对原代视网膜神经细胞的影响 | 第51-52页 |
| 4.2 急性高眼压对视网膜组织形态学的影响 | 第52-54页 |
| 4.3 自噬诱导多肽tat-beclin 1对急性高眼压损伤后大鼠视网膜神经节细胞存活率的影响 | 第54-55页 |
| 4.4 自噬诱导多肽tat-beclin 1对急性高眼压诱导的视网膜细胞凋亡的影响 | 第55-56页 |
| 4.5 Tat-beclin 1通过诱导自噬发生保护视网膜 | 第56-58页 |
| 第五章 实验结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-70页 |
| 附录一 在学期间科研成果 | 第70-71页 |
| 附录二 综述 | 第71-77页 |
| 致谢 | 第77页 |
