| 缩略表 | 第8-9页 |
| 中文摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-26页 |
| 1 多糖硫酸酯的研究现状 | 第14-26页 |
| 1.1 多糖硫酸酯的制备 | 第14-21页 |
| 1.1.1 从天然产物中提取 | 第14-15页 |
| 1.1.2 多糖硫酸酯的化学合成 | 第15-16页 |
| 1.1.3 常见的多糖衍生物选择性合成方法 | 第16-21页 |
| 1.2 多糖硫酸酯的结构表征 | 第21-22页 |
| 1.2.1 硫酸酯的表征 | 第21页 |
| 1.2.2 硫取代度的测定 | 第21页 |
| 1.2.3 硫酸根取代位置的测定 | 第21-22页 |
| 1.3 多糖硫酸酯的生物活性及构效关系 | 第22-25页 |
| 1.3.1 抗肿瘤活性 | 第22-23页 |
| 1.3.2 抗病毒活性 | 第23-24页 |
| 1.3.3 抗凝血 | 第24-25页 |
| 1.4 立项依据 | 第25页 |
| 1.5 实验技术路线 | 第25-26页 |
| 第二章 葫芦巴硫酸酯的非选择性合成 | 第26-47页 |
| 2.1 实验材料和方法 | 第26-29页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第26页 |
| 2.1.2 实验药品 | 第26页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第26页 |
| 2.1.4 实验方法 | 第26-27页 |
| 2.1.5 结构表征 | 第27-29页 |
| 2.2 实验结果与讨论 | 第29-45页 |
| 2.2.1 响应面分析 | 第29-33页 |
| 2.2.2 FT-IR | 第33-34页 |
| 2.2.3 XPS | 第34-36页 |
| 2.2.4 分子量的测定 | 第36-38页 |
| 2.2.5 ~(13)C NMR | 第38-40页 |
| 2.2.6 与MB的络合实验 | 第40-42页 |
| 2.2.7 AFM | 第42-45页 |
| 2.3 本章小结 | 第45-47页 |
| 第三章 葫芦巴多糖硫酸酯的区域选择性合成 | 第47-76页 |
| 3.1 实验材料和方法 | 第47-52页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第47页 |
| 3.1.2 实验药品 | 第47页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第47-48页 |
| 3.1.4 实验方法 | 第48-50页 |
| 3.1.5 结构表征 | 第50-52页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第52-76页 |
| 3.2.1 硅含量的测定 | 第52-54页 |
| 3.2.2 单因素实验 | 第54-65页 |
| 3.2.3 SFG_(TBDPS)的合成及表征 | 第65-72页 |
| 3.2.4 不同体系下的脱保护反应 | 第72-75页 |
| 3.2.5 本章小结 | 第75-76页 |
| 第四章 葫芦巴硫酸酯体外抑制抗肿瘤细胞活性的初步研究 | 第76-91页 |
| 4.1 实验材料和方法 | 第76-80页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第76页 |
| 4.1.2 细胞株 | 第76-77页 |
| 4.1.3 主要实验试剂 | 第77-78页 |
| 4.1.4 实验仪器 | 第78页 |
| 4.1.5 实验方法 | 第78-80页 |
| 4.2 实验结果和讨论 | 第80-90页 |
| 4.2.1 多糖硫酸酯对A549细胞抑制作用、周期和凋亡的影响 | 第80-84页 |
| 4.2.2 多糖硫酸酯对HepG-2细胞抑制作用、周期和凋亡的影响 | 第84-89页 |
| 4.2.3 多糖硫酸酯对Hela细胞的抑制作用 | 第89-90页 |
| 4.3 本章小结 | 第90-91页 |
| 参考文献 | 第91-97页 |
| 硕士期间论文发表情况 | 第97-98页 |
| 致谢 | 第98页 |
