| 致谢 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-7页 |
| 英文摘要 | 第7-8页 |
| 缩略词简表 | 第9-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-21页 |
| 1.1 杨梅素的研究进展 | 第13-17页 |
| 1.1.1 杨梅素的结构性质 | 第13页 |
| 1.1.2 杨梅素的药理活性 | 第13-15页 |
| 1.1.3 杨梅素的来源 | 第15-17页 |
| 1.1.4 杨梅素制剂的研究 | 第17页 |
| 1.2 酪蛋白自组装体系的研究进展 | 第17-20页 |
| 1.2.1 酪蛋白的来源和性质 | 第17-18页 |
| 1.2.2 分子自组装的简介性 | 第18-19页 |
| 1.2.3 酪蛋白自组装体系的研究 | 第19-20页 |
| 1.3 课题研究内容及意义 | 第20-21页 |
| 第二章 杨梅素的制备工艺 | 第21-37页 |
| 2.1 引言 | 第21-22页 |
| 2.2 实验部分 | 第22-25页 |
| 2.2.1 实验仪器 | 第22页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第22页 |
| 2.2.3 二氢杨梅素与杨梅素标准曲线的绘制 | 第22-23页 |
| 2.2.4 原料二氢杨梅素成分分析 | 第23页 |
| 2.2.5 杨梅素的制备及定量方法 | 第23页 |
| 2.2.6 反应产物的结构鉴定 | 第23-24页 |
| 2.2.7 杨梅素制备工艺的优化 | 第24-25页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第25-36页 |
| 2.3.1 二氢杨梅素与杨梅素标准曲线 | 第25-26页 |
| 2.3.2 原料成分及含量测定 | 第26页 |
| 2.3.3 反应产物的结构鉴定 | 第26-30页 |
| 2.3.4 杨梅素制备工艺的优化 | 第30-36页 |
| 本章小结 | 第36-37页 |
| 第三章 自组装法制备酪蛋白-杨梅素纳米粒 | 第37-52页 |
| 3.1 引言 | 第37页 |
| 3.2 实验部分 | 第37-41页 |
| 3.2.1 实验仪器 | 第37-38页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第38页 |
| 3.2.3 酪蛋白纳米粒的制备 | 第38页 |
| 3.2.4 酪蛋白-杨梅素纳米粒的制备 | 第38-39页 |
| 3.2.5 酪蛋白-杨梅素纳米粒包封率和载药量的测定 | 第39页 |
| 3.2.6 酪蛋白-杨梅素纳米粒的表征 | 第39-40页 |
| 3.2.7 酪蛋白纳米粒自组装条件的选择 | 第40页 |
| 3.2.8 酪蛋白-杨梅素纳米粒制备条件的选择 | 第40-41页 |
| 3.2.9 最佳条件下酪蛋白-杨梅素纳米粒的粒径测定 | 第41页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第41-51页 |
| 3.3.1 酪蛋白-杨梅素纳米粒的紫外吸收光谱 | 第41-43页 |
| 3.3.2 酪蛋白-杨梅素纳米粒的红外吸收光谱 | 第43-45页 |
| 3.3.3 酪蛋白纳米粒自组装条件的选择 | 第45-46页 |
| 3.3.4 酪蛋白-杨梅素纳米粒制备条件的选择 | 第46-50页 |
| 3.3.5 最佳条件下酪蛋白-杨梅素纳米粒的粒径测定 | 第50-51页 |
| 本章小结 | 第51-52页 |
| 第四章 杨梅素降糖活性的研究 | 第52-65页 |
| 4.1 引言 | 第52-53页 |
| 4.2 实验部分 | 第53-56页 |
| 4.2.1 实验仪器 | 第53页 |
| 4.2.2 实验动物与材料试剂 | 第53-54页 |
| 4.2.3 四氧嘧啶型糖尿病小鼠模型的构建 | 第54页 |
| 4.2.4 实验小鼠的分组及给药方法 | 第54-55页 |
| 4.2.5 糖尿病小鼠一般生活指标及体重的观察 | 第55页 |
| 4.2.6 小鼠空腹血糖值的测定 | 第55页 |
| 4.2.7 小鼠糖耐量的试验 | 第55页 |
| 4.2.8 小鼠糖化血清蛋白含量的测定 | 第55页 |
| 4.2.9 小鼠血清胰岛素的测定 | 第55页 |
| 4.2.10 小鼠抗氧化性能的试验 | 第55-56页 |
| 4.2.11 小鼠脏器重和脏体比的测定 | 第56页 |
| 4.2.12 统计学方法 | 第56页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第56-64页 |
| 4.3.1 糖尿病小鼠一般生活指标及体重的观察 | 第56-57页 |
| 4.3.2 小鼠空腹血糖值的测定 | 第57-58页 |
| 4.3.3 小鼠糖耐量的测定 | 第58-59页 |
| 4.3.4 小鼠糖化血清蛋白的测定 | 第59-60页 |
| 4.3.5 小鼠血清胰岛素的测定 | 第60-61页 |
| 4.3.6 小鼠抗氧化作用的测定 | 第61-62页 |
| 4.3.7 小鼠脏器重和脏体比的测定 | 第62-64页 |
| 本章小结 | 第64-65页 |
| 第五章 大鼠在体肠吸收实验 | 第65-74页 |
| 5.1 引言 | 第65页 |
| 5.2 实验部分 | 第65-69页 |
| 5.2.1 实验仪器 | 第65-66页 |
| 5.2.2 实验动物与试剂 | 第66页 |
| 5.2.3 供试液的配制 | 第66页 |
| 5.2.4 杨梅素在空白肠循环液中的稳定性 | 第66-67页 |
| 5.2.5 肠壁物理吸附对杨梅素及酚红的影响 | 第67页 |
| 5.2.6 大鼠在体肠吸收实验 | 第67页 |
| 5.2.7 吸收波长的选择 | 第67-68页 |
| 5.2.8 酚红含量的测定方法 | 第68页 |
| 5.2.9 杨梅素含量的测定方法 | 第68-69页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第69-73页 |
| 5.3.1 吸收波长的选择 | 第69页 |
| 5.3.2 酚红标准曲线的绘制 | 第69-70页 |
| 5.3.3 杨梅素标准曲线的绘制 | 第70页 |
| 5.3.4 杨梅素在空白肠循环液中的稳定性 | 第70-71页 |
| 5.3.5 肠壁物理吸附对杨梅素及酚红的影响 | 第71页 |
| 5.3.6 大鼠小肠在体循环实验结果 | 第71-73页 |
| 本章小结 | 第73-74页 |
| 总结与展望 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-82页 |
| 硕士期间发表的论文 | 第82页 |
