| 第一篇 | 第1-43页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-18页 |
| ·PTD简介 | 第12-14页 |
| ·NFAT简介 | 第14-18页 |
| 第二章 研究目的、方法、实验设计方案和意义 | 第18-20页 |
| ·研究目的 | 第18页 |
| ·研究方法和技术 | 第18页 |
| ·实验方案的设计 | 第18页 |
| ·研究意义 | 第18-20页 |
| 第三章 实验材料 | 第20-23页 |
| ·细胞和细胞株 | 第20页 |
| ·实验菌株和质粒 | 第20页 |
| ·主要试剂 | 第20页 |
| ·其他试剂及材料 | 第20-21页 |
| ·主要溶液 | 第21-22页 |
| ·主要仪器 | 第22-23页 |
| 第四章 实验方法 | 第23-32页 |
| ·融合蛋白的表达纯化 | 第23页 |
| ·融合蛋白穿膜功能实验 | 第23-24页 |
| ·乳酸脱氢酶法(LDH)测定融合蛋白细胞毒性实验 | 第24-25页 |
| ·细胞增殖抑制实验 | 第25页 |
| ·细胞因子IL-2的RT-PCR检测 | 第25-30页 |
| ·细胞因子IL-2的ELISA检测 | 第30页 |
| ·IL-2报告基因的萤光检测 | 第30-31页 |
| ·统计学处理 | 第31-32页 |
| 第五章 实验结果与讨论 | 第32-42页 |
| ·融合蛋白表达和纯化 | 第32页 |
| ·PTD-△NFATminiDBD-eGFP融合蛋白穿膜流式细胞术分析 | 第32页 |
| ·激光共聚焦显微镜观察结果 | 第32-33页 |
| ·融合蛋白免疫印迹实验 | 第33页 |
| ·LDH实验检测融合蛋白对PBMC细胞毒性的影响 | 第33-34页 |
| ·检测融合蛋白对PBMC细胞增殖的影响 | 第34-35页 |
| ·细胞因子IL-2的RT-PCR检测 | 第35-38页 |
| ·标准质粒的构建 | 第35-36页 |
| ·细胞因子IL-2的RT-PCR检测 | 第36-38页 |
| ·IL-2报告基因的荧光检测 | 第38页 |
| ·细胞因子IL-2的ELISA检测 | 第38-39页 |
| ·讨论 | 第39-42页 |
| 第六章 主要结论及展望 | 第42-43页 |
| ·主要结论 | 第42页 |
| ·展望 | 第42-43页 |
| 第二篇 | 第43-53页 |
| 摘要 | 第43-44页 |
| ABSTRACT | 第44-45页 |
| 第一章 绪论 | 第45-47页 |
| ·Foxp3简介 | 第45-47页 |
| 第二章 研究目的、方法、实验设计方案和意义 | 第47-48页 |
| ·研究目的 | 第47页 |
| ·研究方法和技术 | 第47页 |
| ·实验方案的设计 | 第47页 |
| ·研究意义 | 第47-48页 |
| 第三章 实验材料 | 第48-49页 |
| ·细胞株 | 第48页 |
| ·实验菌株和质粒 | 第48页 |
| ·主要试剂 | 第48页 |
| ·主要仪器 | 第48-49页 |
| 第四章 实验方法 | 第49-50页 |
| ·融合蛋白的表达纯化 | 第49页 |
| ·EL-4细胞增殖抑制试验 | 第49页 |
| ·流式细胞术检测EL-4细胞凋亡 | 第49页 |
| ·统计学处理 | 第49-50页 |
| 第五章 实验结果与讨论 | 第50-52页 |
| ·融合蛋白表达和纯化 | 第50页 |
| ·PTD-mFoxp3对EL-4细胞增殖的影响 | 第50页 |
| ·PTD-mFoxp3对EL-4细胞凋亡的诱导作用 | 第50-51页 |
| ·讨论 | 第51-52页 |
| 第六章 主要结论及展望 | 第52-53页 |
| ·主要结论 | 第52页 |
| ·展望 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-59页 |
| 英文缩写索引 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第61页 |