| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 缩略语 | 第6-10页 |
| 1 绪论 | 第10-22页 |
| 1.1 炭样小单孢菌及其活性产物 | 第10-11页 |
| 1.1.1 炭样小单孢菌 | 第10页 |
| 1.1.2 炭样小单孢菌抗菌活性物质 | 第10-11页 |
| 1.1.3 炭样小单孢菌JXNU-1及其活性产物 | 第11页 |
| 1.2 水稻白叶枯病治研究 | 第11-14页 |
| 1.2.1 水稻白叶枯病及其病原 | 第11-12页 |
| 1.2.2 水稻白叶枯病防治研究状 | 第12-14页 |
| 1.3 FtsZ蛋白及其抑制剂 | 第14-20页 |
| 1.3.1 FtsZ蛋白简介 | 第14-15页 |
| 1.3.2 FtsZ蛋白作菌药物靶点的潜力 | 第15-16页 |
| 1.3.3 FtsZ蛋白抑制剂研究 | 第16-20页 |
| 1.4 研究目的和意义 | 第20页 |
| 1.5 研究内容方法 | 第20-22页 |
| 2 水稻白叶枯病菌FtsZ蛋白因的克隆表达 | 第22-36页 |
| 2.1 验材料 | 第22-25页 |
| 2.1.1 菌种质粒 | 第22页 |
| 2.1.2 培养基 | 第22页 |
| 2.1.3 分子生物学试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.4 学药品 | 第23-24页 |
| 2.1.5 试剂配制 | 第24-25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-30页 |
| 2.2.1 水稻白叶枯病菌总DNA的提 | 第25页 |
| 2.2.2 FtsZ因的扩增 | 第25-26页 |
| 2.2.3 电泳检测 | 第26页 |
| 2.2.4 pMD19 -ftsZ组质粒的构建 鉴定 | 第26-27页 |
| 2.2.5 pET-22b-ftsZ组质粒的构建和鉴定 | 第27-28页 |
| 2.2.6 目的因的诱表达 | 第28页 |
| 2.2.7 SDS-PAGE电泳检测 | 第28-29页 |
| 2.2.8 目的蛋白的纯化 | 第29-30页 |
| 2.2.9 Western blotting分析 | 第30页 |
| 2.3 结果与分析 | 第30-35页 |
| 2.3.1 总DNA的提取 | 第30-31页 |
| 2.3.2 目的因的获得 | 第31页 |
| 2.3.3 pMD19-ftsZ组质粒鉴定 | 第31-33页 |
| 2.3.4 pET-22b-ftsZ组质粒鉴定 | 第33-34页 |
| 2.3.5 测序鉴定 | 第34页 |
| 2.3.6 FtsZ蛋白的表达纯化 | 第34-35页 |
| 2.4 本章小结 | 第35-36页 |
| 3 水稻白叶枯病菌FtsZ蛋白表达条的优 | 第36-42页 |
| 3.1 验材料 | 第36-37页 |
| 3.1.1 验菌株 | 第36页 |
| 3.1.2 验试剂 | 第36页 |
| 3.1.3 验仪器和设备 | 第36-37页 |
| 3.2 实验方法 | 第37-38页 |
| 3.2.1 FtsZ蛋白的诱表达 | 第37页 |
| 3.2.2 诱导表达量的分析 | 第37-38页 |
| 3.3 总结讨论 | 第38-41页 |
| 3.3.1 菌体浓度对FtsZ蛋白表达的影响 | 第38页 |
| 3.3.2 IPTG浓度对FtsZ蛋白表达的影响 | 第38-39页 |
| 3.3.3 温度对FtsZ蛋白表达的影响 | 第39-40页 |
| 3.3.4 诱时间对FtsZ蛋白表达的影响 | 第40-41页 |
| 3.4 本章小结 | 第41-42页 |
| 4 水稻白叶枯病菌FtsZ蛋GTPase学特性研究 | 第42-56页 |
| 4.1 实验材料 | 第42-45页 |
| 4.1.1 菌种 | 第42页 |
| 4.1.2 要试剂和仪器 | 第42-44页 |
| 4.1.3 试剂配制 | 第44-45页 |
| 4.1.4 养 | 第45页 |
| 4.2 实验方法 | 第45-47页 |
| 4.2.1 FtsZ蛋白的制备和纯 | 第45页 |
| 4.2.2 FtsZ蛋白结构析 | 第45-46页 |
| 4.2.3 FtsZ蛋白的学性质 | 第46页 |
| 4.2.4 分析方法 | 第46-47页 |
| 4.3 总结讨论 | 第47-53页 |
| 4.3.1 FtsZ蛋白的制备 | 第47页 |
| 4.3.2 FtsZ蛋白的结构 | 第47-50页 |
| 4.3.3 FtsZ蛋白的学性质 | 第50-53页 |
| 4.4 本章小结 | 第53-56页 |
| 5 炭小单胞菌JXNU-1 生素水稻白叶枯病菌作用 | 第56-64页 |
| 5.1 实验材料 | 第56-58页 |
| 5.1.1 菌种 | 第56页 |
| 5.1.2 养 | 第56-57页 |
| 5.1.3 实验试剂和仪器 | 第57-58页 |
| 5.2 试验方法 | 第58-61页 |
| 5.2.1 炭样小单孢菌JXNU-1 发液的制备 | 第58页 |
| 5.2.2 炭样小单孢菌JXNU-1 生素的制备 | 第58-59页 |
| 5.2.3 水稻白叶枯病菌菌悬液的制备 | 第59页 |
| 5.2.4 炭样小单孢菌JXNU-1 生素对水稻白叶枯病菌的菌作用 | 第59页 |
| 5.2.5 炭样小单孢菌JXNU-1 生素对水稻白叶枯病菌形态的影响 | 第59-60页 |
| 5.2.6 炭样小单孢菌JXNU-1 生素对Fts Z GTPase活性影响 | 第60页 |
| 5.2.7 FtsZ蛋白的GTPase活性检测 | 第60-61页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第61-63页 |
| 5.3.1 炭样小单孢菌JXNU-1 生素对水稻白叶枯病菌的菌作用 | 第61页 |
| 5.3.2 MIC浓度 菌体形态的 | 第61-62页 |
| 5.3.3 炭样小单孢菌JXNU-1 生素对Fts Z蛋GTPase活性影响 | 第62-63页 |
| 5.4 本章小结 | 第63-64页 |
| 6 结论展望 | 第64-66页 |
| 6.1 结论 | 第64页 |
| 6.2 下一步工作计划 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-72页 |
| 附录 | 第72-74页 |
| 致谢 | 第74-76页 |
| 在读期间公开发表论文著科研情况 | 第76页 |
