| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第10-17页 |
| 1.1 羧甲基茯苓多糖 | 第10-11页 |
| 1.2 多糖结构与生物活性的研究 | 第11-12页 |
| 1.3 多糖修饰物的抗肿瘤作用机制 | 第12-13页 |
| 1.3.1 诱导肿瘤细胞凋亡 | 第12页 |
| 1.3.2 抑制肿瘤细胞的周期 | 第12-13页 |
| 1.3.3 增强机体抗氧化活性 | 第13页 |
| 1.3.4 激活机体免疫应答 | 第13页 |
| 1.3.5 抑制肿瘤新生血管的生成 | 第13页 |
| 1.4 细胞凋亡 | 第13-16页 |
| 1.4.1 死亡受体信号通路 | 第14-15页 |
| 1.4.2 线粒体信号通路 | 第15-16页 |
| 1.5 选题目的与意义 | 第16-17页 |
| 第二章 羧甲基茯苓多糖对HepG2细胞的抑制作用 | 第17-26页 |
| 2.1 材料与方法 | 第17-20页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第17-18页 |
| 2.1.2 实验试剂与耗材 | 第18页 |
| 2.1.3 主要仪器耗材 | 第18页 |
| 2.1.4 HepG2细胞培养方法 | 第18-19页 |
| 2.1.5 药物配制 | 第19页 |
| 2.1.6 CCK-8法检测CMP对HepG2细胞的抑制作用 | 第19-20页 |
| 2.1.7 统计学分析 | 第20页 |
| 2.2 结果与分析 | 第20-23页 |
| 2.2.1 CMP样品对HepG2细胞的抑制作用 | 第20-21页 |
| 2.2.2 750μg/mL的CMP样品对HepG2细胞的抑制作用 | 第21-22页 |
| 2.2.3 CMP3对HepG2细胞的抑制作用 | 第22-23页 |
| 2.3 本章小结 | 第23-26页 |
| 2.3.1 讨论 | 第23-24页 |
| 2.3.2 结论 | 第24-26页 |
| 第三章 羧甲基茯苓多糖诱导HepG2细胞凋亡的作用机制 | 第26-41页 |
| 3.1 材料与方法 | 第26-33页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第26页 |
| 3.1.2 实验试剂与耗材 | 第26-27页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第27-28页 |
| 3.1.4 实验方法 | 第28-33页 |
| 3.1.5 统计学分析 | 第33页 |
| 3.2 结果与分析 | 第33-38页 |
| 3.2.1 流式细胞仪检测细胞凋亡率 | 第33-34页 |
| 3.2.2 蛋白质印迹法检测绿原酸作用HepG2细胞后凋亡相关蛋白的表达 | 第34-36页 |
| 3.2.3 RNA浓度及纯度结果 | 第36页 |
| 3.2.4 琼脂糖凝胶电泳鉴定RNA | 第36-37页 |
| 3.2.5 实时荧光定量PCR检测凋亡相关基因mRNA的表达 | 第37-38页 |
| 3.3 本章小结 | 第38-41页 |
| 3.3.1 讨论 | 第38-40页 |
| 3.3.2 结论 | 第40-41页 |
| 第四章 结论与创新点 | 第41-42页 |
| 4.1 结论 | 第41页 |
| 4.2 创新点 | 第41页 |
| 4.3 下一步工作计划 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 作者简介 | 第49页 |
