| 摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 引言 | 第8-10页 |
| 材料与方法 | 第10-22页 |
| 1 材料 | 第10-12页 |
| 1.1 主要仪器设备 | 第10-11页 |
| 1.2 主要实验试剂 | 第11-12页 |
| 1.3 实验动物 | 第12页 |
| 2 方法 | 第12-22页 |
| 2.1 小鼠坐骨神经损伤模型的制备 | 第12-13页 |
| 2.2 小鼠坐骨神经RNA的提取和实时定量PCR | 第13-16页 |
| 2.2.1 总RNA的提取 | 第13-14页 |
| 2.2.2 逆转录反应 | 第14-15页 |
| 2.2.3 Real-time PCR 反应 | 第15-16页 |
| 2.3 Western-Blot 检测相关蛋白表达水平 | 第16-19页 |
| 2.3.1 提取坐骨神经组织总蛋白 | 第16页 |
| 2.3.2 BCA法测定蛋白浓度 | 第16页 |
| 2.3.3 蛋白浓度调整和蛋白变性 | 第16-17页 |
| 2.3.4 制备 SDS-PAGE 凝胶 | 第17页 |
| 2.3.5 上样电泳与转膜 | 第17-18页 |
| 2.3.6 封闭、一抗、二抗及显影检测 | 第18-19页 |
| 2.4 免疫组化测定组织中的蛋白表达 | 第19-20页 |
| 2.4.1 小鼠坐骨神经取材 | 第19页 |
| 2.4.2 免疫组化实验的步骤 | 第19-20页 |
| 2.5 坐骨神经功能指数 | 第20-21页 |
| 2.6 统计学分析 | 第21-22页 |
| 结果 | 第22-32页 |
| 1 急性期检测坐骨神经损伤后炎性因子的变化情况 | 第22-27页 |
| 1.1 小鼠坐骨神经损伤模型的构建 | 第22页 |
| 1.2 坐骨神经损伤后急性期炎性因子的变化情况 | 第22-24页 |
| 1.3 小鼠坐骨神经损伤后蛋白表达差异 | 第24-27页 |
| 2 小鼠坐骨神经损伤后的慢性期效应 | 第27-32页 |
| 2.1 小鼠坐骨神经损伤后的功能恢复 | 第27页 |
| 2.2 免疫组化法检测损伤后慢性期的蛋白表达 | 第27-29页 |
| 2.3 坐骨神经损伤后 HeN 组小鼠炎症反应更加强烈 | 第29-30页 |
| 2.4 GAP-43 和 p75NTR 蛋白表达变化 | 第30-32页 |
| 讨论 | 第32-35页 |
| 结论 | 第35-36页 |
| 参考文献 | 第36-39页 |
| 综述 | 第39-50页 |
| 综述参考文献 | 第47-50页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
