| 致谢 | 第5-8页 |
| 摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 缩略词 | 第15-21页 |
| 1 绪论 | 第21-60页 |
| 1.1 神经鞘脂类似类真菌毒素(SAMT) | 第21-27页 |
| 1.1.1 SAMT的化学结构 | 第21-22页 |
| 1.1.2 SAMT的污染与危害 | 第22-24页 |
| 1.1.3 SAMT的致病机理 | 第24-26页 |
| 1.1.4 SAMT诱发植物PCD的研究 | 第26-27页 |
| 1.2 芥子油苷代谢途径在植物抗性中的作用机制研究进展 | 第27-46页 |
| 1.2.1 芥子油苷的结构和分类 | 第28-29页 |
| 1.2.2 芥子油苷的生物学功能 | 第29-33页 |
| 1.2.3 芥子油苷的生物合成与调控 | 第33-38页 |
| 1.2.4 芥子油苷的代谢 | 第38-44页 |
| 1.2.5 色氨酸起始的次生代谢 | 第44-46页 |
| 1.3 茉莉酸在植物抗性中的作用机制研究进展 | 第46-53页 |
| 1.3.1 茉莉酸的生物合成途径 | 第46-49页 |
| 1.3.2 茉莉酸的信号转导途径 | 第49-50页 |
| 1.3.3 茉莉酸在植物防御中的作用 | 第50-53页 |
| 1.4 番茄茎枯病及其抗性机制研究进展 | 第53-56页 |
| 1.4.1 番茄茎枯病与链格孢菌和AAL-Toxin | 第53-54页 |
| 1.4.2 Asc-1位点与番茄对AAL-Toxin敏感性 | 第54-55页 |
| 1.4.3 植物激素在AAL-Toxin诱导PCD中的作用 | 第55-56页 |
| 1.5 本研究立题依据与研究目标 | 第56-60页 |
| 1.5.1 立题依据 | 第56-58页 |
| 1.5.2 本论文的研究内容和目标 | 第58-60页 |
| 2 芥子油苷在腐马素B1诱导的细胞程序化死亡中的作用及机理 | 第60-81页 |
| 2.1 引言 | 第60-61页 |
| 2.2 材料和方法 | 第61-66页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第61-62页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第62-66页 |
| 2.3 结果与分析 | 第66-76页 |
| 2.3.1 FB1引发的拟南芥叶片PCD表型分析 | 第66页 |
| 2.3.2 芥子油苷生物合成相关基因对FB1的响应 | 第66-67页 |
| 2.3.3 FB1对拟南芥中芥子油苷含量的影响 | 第67-68页 |
| 2.3.4 芥子油苷生物合成突变体对FB1的敏感性 | 第68-69页 |
| 2.3.5 芥子油苷的降解途径对FB1的响应 | 第69-71页 |
| 2.3.6 外源吲哚类芥子油苷的施加对FB1诱导的PCD的影响 | 第71-73页 |
| 2.3.7 外源吲哚类芥子油苷降解产物对FB1诱导的PCD的影响 | 第73页 |
| 2.3.8 外源吲哚类芥子油苷降解产物对FB1诱导的ROS积累的影响 | 第73-75页 |
| 2.3.9 色氨酸起始的其它次生代谢物质对FB1诱导的PCD的影响 | 第75-76页 |
| 2.4 讨论 | 第76-79页 |
| 2.5 本章小结 | 第79-81页 |
| 3 JA对FB1诱导的PCD的影响及其作用机制 | 第81-90页 |
| 3.1 引言 | 第81-82页 |
| 3.2 材料和方法 | 第82-83页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第82页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第82-83页 |
| 3.3 结果与分析 | 第83-87页 |
| 3.3.1 JA突变体对FB1的敏感性 | 第83-84页 |
| 3.3.2 JA相关突变体中吲哚类芥子油苷含量分析 | 第84-85页 |
| 3.3.3 吲哚类芥子油苷在JA缓解FB1诱导的PCD中的作用 | 第85-86页 |
| 3.3.4 外源JA处理对吲哚类芥子油苷代谢的影响 | 第86-87页 |
| 3.4 讨论 | 第87-89页 |
| 3.5 本章小结 | 第89-90页 |
| 4 拟南芥FB1抗性基因Fumonisin B1 Resistant 41(FBR41)的克隆 | 第90-107页 |
| 4.1 引言 | 第90-92页 |
| 4.2 材料和方法 | 第92-96页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第92页 |
| 4.2.2 实验方法 | 第92-96页 |
| 4.3 结果与分析 | 第96-102页 |
| 4.3.1 fbr41突变体的遗传学分析 | 第96-97页 |
| 4.3.2 FBR41基因的图位克隆 | 第97-99页 |
| 4.3.3 FBR41-D的DNA序列分析 | 第99页 |
| 4.3.4 FBR41-D的CDS及蛋白序列分析 | 第99-100页 |
| 4.3.5 FBR41的基因表达分析 | 第100-101页 |
| 4.3.6 突变基因的功能互补分析 | 第101-102页 |
| 4.4 讨论 | 第102-106页 |
| 4.5 本章小结 | 第106-107页 |
| 5 拟南芥基因FBR41-D在番茄中的遗传转化与功能分析 | 第107-116页 |
| 5.1 引言 | 第107-108页 |
| 5.2 材料和方法 | 第108-111页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第108-109页 |
| 5.2.2 实验方法 | 第109-111页 |
| 5.3 结果与分析 | 第111-114页 |
| 5.3.1 转基因番茄植株的获得 | 第111-112页 |
| 5.3.2 转基因番茄植株的PCR检测 | 第112页 |
| 5.3.3 转基因番茄植株的遗传分析及纯合株系的获得 | 第112-113页 |
| 5.3.4 转基因番茄植株对AAL-Toxin敏感性 | 第113-114页 |
| 5.4 讨论 | 第114-115页 |
| 5.5 本章小结 | 第115-116页 |
| 6 结论、创新点与后续研究展望 | 第116-121页 |
| 6.1 结论 | 第116-117页 |
| 6.2 创新点 | 第117-118页 |
| 6.3 后续研究展望 | 第118-121页 |
| 参考文献 | 第121-145页 |
| 个人简介 | 第145页 |
