| 项目资助 | 第6页 |
| ACKNOWLEDGEMENTS | 第6-7页 |
| 致谢 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 缩写 | 第12-13页 |
| 目次 | 第13-17页 |
| 1 文献综述 | 第17-57页 |
| 1.1 耐辐射奇球菌形态基本特征 | 第17-18页 |
| 1.2 耐辐射奇球菌基因组结构 | 第18-19页 |
| 1.3 耐辐射奇球菌抗性研究 | 第19-21页 |
| 1.4 耐辐射奇球菌抗性机制研究 | 第21-30页 |
| 1.4.1 耐辐射奇球菌的预防保护机制 | 第21-26页 |
| 1.4.2 耐辐射奇球菌的相关修复机制 | 第26-30页 |
| 1.4.3 耐辐射奇球菌的特有抗性相关修复新蛋白 | 第30页 |
| 1.5 微生物类胡萝卜素的研究 | 第30-39页 |
| 1.5.1 结构 | 第30-32页 |
| 1.5.2 生物合成途径 | 第32-34页 |
| 1.5.3 类胡萝卜素功能 | 第34-37页 |
| 1.5.4 耐辐射奇球菌的类胡萝卜素 | 第37-39页 |
| 1.6 耐辐射奇球菌的黄色相关蛋白 | 第39-40页 |
| 1.7 耐辐射奇球菌的应用 | 第40-42页 |
| 1.8 小结 | 第42-43页 |
| 1.9 参考文献 | 第43-57页 |
| 2 耐辐射奇球菌DR1790的生物信息学分析、突变株和补偿株的构建及其特性分析 | 第57-81页 |
| 2.1 引言 | 第57页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第57-64页 |
| 2.2.1 试剂与仪器设备 | 第57-58页 |
| 2.2.2 生物信息学分析 | 第58页 |
| 2.2.3 菌株、质粒 | 第58-59页 |
| 2.2.4 突变株构建 | 第59-60页 |
| 2.2.5 功能补偿株构建 | 第60-61页 |
| 2.2.6 细胞生长速率测定 | 第61-62页 |
| 2.2.7 类胡萝卜素含量的测定 | 第62页 |
| 2.2.8 过氧化氢(H_2O_2)处理细胞存活率测定 | 第62页 |
| 2.2.9 γ-射线辐射处理细胞存活率测定 | 第62-63页 |
| 2.2.10 过氧化氢(H_2O_2)处理的细胞内蛋白羰基含量测定 | 第63页 |
| 2.2.11 细胞膜通透性测定 | 第63-64页 |
| 2.3 结果与分析 | 第64-76页 |
| 2.3.1 生物信息学分析 | 第64-69页 |
| 2.3.2 耐辐射奇球菌DR1790基因突变株构建与鉴定 | 第69-70页 |
| 2.3.3 耐辐射奇球菌DR1790基因功能补偿株构建 | 第70-71页 |
| 2.3.4 细胞生长速率比较 | 第71-72页 |
| 2.3.5 类胡萝卜素含量比较 | 第72-73页 |
| 2.3.6 过氧化氣(H_2O_2 )处理后细胞存活率比较 | 第73-74页 |
| 2.3.7 γ-射线辐射处理后细胞存活率比较 | 第74页 |
| 2.3.8 过氧化氢(H_2O_2)处理后细胞内蛋白氧化水平比较 | 第74-75页 |
| 2.3.9 细胞膜完整性比较 | 第75-76页 |
| 2.4 讨论 | 第76-77页 |
| 2.5 结论与展望 | 第77-78页 |
| 2.6 参考文献 | 第78-81页 |
| 3 耐辐射奇球菌DR1790蛋白的细胞定位与转录表达分析 | 第81-97页 |
| 3.1 引言 | 第81页 |
| 3.2 实验材料与方法 | 第81-86页 |
| 3.2.1 菌株与培养 | 第81-82页 |
| 3.2.2 试剂与仪器 | 第82-83页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第83-86页 |
| 3.3 结果与分析 | 第86-92页 |
| 3.3.1 DR1790的细胞定位 | 第86-87页 |
| 3.3.2 转录谱分析比较 | 第87-91页 |
| 3.3.3 QRT-PCR分析验证 | 第91-92页 |
| 3.4 讨论 | 第92-93页 |
| 3.5 结论与展望 | 第93-94页 |
| 3.6 参考文献 | 第94-97页 |
| 4 耐辐射奇球菌类胡萝卜素的发酵制备与抗氧化性分析 | 第97-111页 |
| 4.1 引言 | 第97-98页 |
| 4.2 材料与方法 | 第98-100页 |
| 4.2.1 菌种与培养基 | 第98页 |
| 4.2.2 菌种的活化和发酵培养过程 | 第98页 |
| 4.2.3 菌体生物量的测定方法 | 第98页 |
| 4.2.4 培养条件的优化 | 第98页 |
| 4.2.5 类胡萝卜素的破壁提取 | 第98-99页 |
| 4.2.6 类胡萝卜素提取物的成分分析 | 第99页 |
| 4.2.7 类胡萝卜素提取物的抗氧化分析 | 第99-100页 |
| 4.3 结果与分析 | 第100-106页 |
| 4.3.1 碳源和氮源对黄浆水培养菌体生物量和类胡萝卜素合成的影响 | 第100-102页 |
| 4.3.2 pH对菌体生物量和类胡萝卜素产量的影响 | 第102页 |
| 4.3.3 Mg~(2+)对菌体生物量和类胡萝卜素合成的影响 | 第102-103页 |
| 4.3.4 破壁提取类胡萝卜素的效果 | 第103-104页 |
| 4.3.5 类胡萝卜素提取物的成分分析 | 第104页 |
| 4.3.6 Deinoxanthin提取物的体外抗氧化效果 | 第104-106页 |
| 4.4 讨论 | 第106-107页 |
| 4.5 结论与展望 | 第107-109页 |
| 4.6 参考文献 | 第109-111页 |
| 5 耐辐射奇球菌类胡萝卜素的体内肝化学损伤保护活性研究 | 第111-125页 |
| 5.1 引言 | 第111-112页 |
| 5.2 实验材料与方法 | 第112-114页 |
| 5.2.1 菌株生长条件 | 第112页 |
| 5.2.2 试剂与仪器 | 第112页 |
| 5.2.3 类胡萝卜素的提取 | 第112页 |
| 5.2.4 类胡萝卜素提取物的动物饲喂 | 第112-113页 |
| 5.2.5 指标测定 | 第113-114页 |
| 5.2.6 数据统计 | 第114页 |
| 5.3 结果与分析 | 第114-118页 |
| 5.3.1 对血清中ALT,AST和ALP酶活性影响 | 第114-116页 |
| 5.3.2 对肝组织中SOD,CAT,GSH-Px和MDA的影响 | 第116-117页 |
| 5.3.3 肝组织的形态学观察分析 | 第117-118页 |
| 5.4 讨论 | 第118-120页 |
| 5.5 结论与展望 | 第120-122页 |
| 5.6 参考文献 | 第122-125页 |
| 作者简介 | 第125页 |
| 博士期间发表的论文与专利 | 第125页 |
