| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 英文縮略表 | 第9-10页 |
| 第一章 前言 | 第10-14页 |
| 第二章 材料与方法 | 第14-21页 |
| 2.1 材料 | 第14-16页 |
| 2.1.1 受试细胞及动物 | 第14页 |
| 2.1.2 受试物 | 第14页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第14页 |
| 2.1.4 主要试剂溶液的配置 | 第14-15页 |
| 2.1.5 主要仪器 | 第15-16页 |
| 2.2 方法 | 第16-21页 |
| 2.2.1 实验技术路线 | 第16页 |
| 2.2.2 小鼠RAW.264.7及NIH3T3细胞培养 | 第16页 |
| 2.2.3 小鼠原代肺泡巨噬细胞收集和纯度测定(ACP染色法) | 第16-17页 |
| 2.2.4 两种类型巨噬细胞吞噬率测定(鸡红细胞吞噬率实验) | 第17页 |
| 2.2.5 细胞存活率测定(MTT法) | 第17-18页 |
| 2.2.6 细胞因子IL-8,TNF-α及TGF-β1的测定(ELISA法) | 第18页 |
| 2.2.7 SiO_2刺激PAM上清液的获取 | 第18-19页 |
| 2.2.8 NIH3T3细胞的分组处理 | 第19页 |
| 2.2.9 NIH3T3细胞内ASM活性检测(高效液相色谱法) | 第19页 |
| 2.2.10 NIH3T3细胞内羟脯氨酸(HYP)含量测定(消化法) | 第19-20页 |
| 2.2.11 NIH3T3细胞胶原纤维染色(Van Gieson染色法) | 第20页 |
| 2.2.12 NIH3T3细胞内胶原Ⅲ表达测定(Western蛋白印迹法) | 第20页 |
| 2.2.13 统计分析 | 第20-21页 |
| 第三章 结果 | 第21-32页 |
| 3.1 PAM细胞纯度测定 | 第21页 |
| 3.2 RAW.264.7和PAM吞噬功能及分泌功能的比较 | 第21-23页 |
| 3.2.1 SiO_2对RAW.264.7与PAM存活率的影响 | 第21-22页 |
| 3.2.2 SiO_2 R AW.264.7与PAM吞噬功能的比较 | 第22页 |
| 3.2.3 SiO_2对RAW.264.7与PAM分泌IL-8及TGF-β1的比较 | 第22-23页 |
| 3.3 SiO_2对PAM分泌IL-8,TNF-α及TGF-β1的时间效应 | 第23-24页 |
| 3.4 地昔帕明抑制剂浓度的选择 | 第24-25页 |
| 3.4.1 不同浓度地昔帕明对NIH3T3细胞毒性测定 | 第24-25页 |
| 3.4.2 不同浓度地昔帕明对ASM活性抑制程度测定 | 第25页 |
| 3.5 SiO_2对NIH3T3细胞内ASM活性影响及地昔帕明的干预作用 | 第25-27页 |
| 3.6 SiO_2对NIH3T3细胞分泌HYP的影响及地昔帕明的干预作用 | 第27-28页 |
| 3.7 SiO_2对NIH3T3细胞胶原纤维表达的影响及地昔帕明的干预作用 | 第28-30页 |
| 3.8 SiO_2对NIH3T3细胞胶原Ⅲ表达的影响及地昔帕明的干预作用 | 第30-31页 |
| 3.9 NIH3T3细胞内ASM与羟脯氨酸及胶原Ⅲ表达相关性分析 | 第31-32页 |
| 第四章 讨论 | 第32-38页 |
| 4.1 两种类型巨噬细胞吞噬功能和反应活性的比较与选择 | 第32-34页 |
| 4.2 SiO_2诱导PAM细胞分泌IL-8,TNF-α及TGF-β1影响 | 第34-35页 |
| 4.3 SiO_2对NIH3T3细胞内ASM活性影响 | 第35页 |
| 4.4 SiO_2对NIH3T3细胞纤维化的影响 | 第35-36页 |
| 4.5 SiO_2致NIH3T3细胞纤维化形成与ASM的关系 | 第36-38页 |
| 第五章 结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-44页 |
| 综述 | 第44-53页 |
| 参考文献 | 第48-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 研究生期间的成绩 | 第54页 |
