| 中英文缩略词表 | 第8-9页 |
| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-12页 |
| 引言 | 第14-17页 |
| 第一部分 实时荧光定量PCR检测辐射敏感基因剂量效应的研究 | 第17-45页 |
| 1 材料与方法 | 第17-25页 |
| 1.1 材料 | 第17-18页 |
| 1.1.1 研究对象 | 第17页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第17页 |
| 1.1.3 主要器材 | 第17页 |
| 1.1.4 主要仪器 | 第17页 |
| 1.1.5 基因引物和探针 | 第17-18页 |
| 1.1.6 数据处理软件 | 第18页 |
| 1.2 方法 | 第18-25页 |
| 1.2.1 试剂溶液的配置 | 第18页 |
| 1.2.2 照射BALB/C小鼠分组表 | 第18-20页 |
| 1.2.3 尾静脉血的采集 | 第20页 |
| 1.2.4 小鼠全身外周血的采集 | 第20-21页 |
| 1.2.5 血清和去血清血的获取 | 第21页 |
| 1.2.6 LPS腹腔注射方法和用量 | 第21页 |
| 1.2.7 小鼠外周血淋巴细胞的分离 | 第21-22页 |
| 1.2.8 小鼠外周血全血RNA提取 | 第22页 |
| 1.2.9 淋巴细胞RNA的提取 | 第22-23页 |
| 1.2.10 血清RNA的提取 | 第23-24页 |
| 1.2.11 去血清外周血RNA的提取 | 第24页 |
| 1.2.12 反转录获得cDNA的体系和程序 | 第24-25页 |
| 1.2.13 Real-TimePCR反应体系和程序 | 第25页 |
| 2 结果 | 第25-40页 |
| 2.1 实验样本的选择 | 第25-30页 |
| 2.1.1 外周血、去血清血和淋巴细胞中TRIAP1和AEN基因表达比较 | 第25-26页 |
| 2.1.2 外周血、去血清血和血清中TRIAP1和AEN基因表达比较 | 第26-30页 |
| 2.2 cDNA稀释倍数的优化 | 第30-32页 |
| 2.3 建立BALB/C小鼠电离辐射模型 | 第32-33页 |
| 2.4 辐射后两基因表达的时间效应与剂量效应分析 | 第33-38页 |
| 2.4.1 TRIAP1基因表达时间-效应和剂量-效应分析 | 第34-36页 |
| 2.4.2 AEN基因表达时间效应和剂量-效应分析 | 第36-38页 |
| 2.5 TRIAP1和AEN基因在小鼠注射LPS模拟炎症反应中的相对表达分析 | 第38-40页 |
| 3 讨论 | 第40-43页 |
| 3.1 实验样本的选择 | 第40页 |
| 3.2 目的基因的选择 | 第40-42页 |
| 3.3 TRIAP1和AEN基因表达的时间效应与剂量效应 | 第42-43页 |
| 3.4 TRIAP1和AEN基因的辐射敏感特异性 | 第43页 |
| 3.5 实时定量PCR方法检测TRIAP1和AEN基因作为生物剂量计的展望 | 第43页 |
| 4 结论 | 第43-45页 |
| 第二部分 表面增强拉曼(SERS)检测辐射小鼠血清方法建立 | 第45-65页 |
| 1 材料与方法 | 第45-49页 |
| 1.1 材料 | 第45页 |
| 1.1.1 研究对象 | 第45页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第45页 |
| 1.1.3 主要器材 | 第45页 |
| 1.1.4 主要仪器 | 第45页 |
| 1.1.5 数据处理软件 | 第45页 |
| 1.2 方法 | 第45-49页 |
| 1.2.1 照射C57BL/6J小鼠分组表 | 第45-46页 |
| 1.2.2 小鼠模型组数据采集时间安排 | 第46-47页 |
| 1.2.3 尾静脉血的采集 | 第47页 |
| 1.2.4 小鼠全身外周血的采集 | 第47页 |
| 1.2.5 血清的获取 | 第47页 |
| 1.2.6 SERS检测操作的流程 | 第47-48页 |
| 1.2.7 银溶胶的制备步骤 | 第48页 |
| 1.2.8 银溶胶的浓缩方式 | 第48页 |
| 1.2.9 血清与纳米银溶胶混合检测步骤 | 第48-49页 |
| 2 结果 | 第49-61页 |
| 2.1 建立C57BL/6J小鼠电离辐射模型 | 第49-50页 |
| 2.2 银溶胶质量的检验 | 第50-51页 |
| 2.3 检测条件的优化 | 第51-55页 |
| 2.3.1 银溶胶浓缩倍数的优化 | 第51-52页 |
| 2.3.2 血清与银溶胶孵育温度的优化 | 第52-53页 |
| 2.3.3 血清与银溶胶混合比例的优化 | 第53-54页 |
| 2.3.4 血清与银溶胶孵育时间的优化 | 第54-55页 |
| 2.4 不同辐射剂量小鼠血清SERS检测光谱 | 第55-56页 |
| 2.5 小鼠不同辐射剂量OPLS-DA分类结果 | 第56-57页 |
| 2.6 0Gy、7Gy和9Gy剂量组小鼠模型和SERS血清检测光谱 | 第57-59页 |
| 2.7 0Gy、7Gy和9Gy不同剂量组OPLS-DA分类结果 | 第59-60页 |
| 2.8 SERS峰位拉曼位移对应所属的分属物 | 第60-61页 |
| 3 讨论 | 第61-64页 |
| 3.1 实验条件的优化 | 第61页 |
| 3.2 小鼠辐射损伤模型 | 第61-62页 |
| 3.3 SERS检测辐射小鼠血清光谱 | 第62-63页 |
| 3.4 OPLS-DA统计分析 | 第63页 |
| 3.5 非标记SERS检测辐射小鼠血清技术作为快速现场检测方法的展望 | 第63-64页 |
| 4 结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-69页 |
| 附录 | 第69-70页 |
| 在读期间发表论文 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 综述 辐射生物剂量计技术的研究进展 | 第72-80页 |
| 参考文献 | 第78-80页 |
