中文摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
中英文缩略词表 | 第7-11页 |
前言 | 第11-17页 |
参考文献 | 第14-17页 |
第一章 人脐静脉内皮细胞分离培养及内皮损伤模型建立 | 第17-34页 |
1.1 实验材料 | 第18-20页 |
1.1.1 主要试剂 | 第18-19页 |
1.1.2 主要仪器设备 | 第19页 |
1.1.3 试剂配制 | 第19-20页 |
1.2 人脐静脉内皮细胞的分离、培养及鉴定 | 第20-23页 |
1.2.1 器械准备 | 第20页 |
1.2.2 实验步骤 | 第20-21页 |
1.2.3 传代 | 第21-22页 |
1.2.4 鉴定 | 第22页 |
1.2.5 冻存 | 第22页 |
1.2.6 复苏 | 第22-23页 |
1.3 内皮损伤模型的建立 | 第23-24页 |
1.3.1 实验分组 | 第23页 |
1.3.2 免疫荧光法检测TLR4蛋白的表达 | 第23页 |
1.3.3 ELISA检测细胞培养上清中IL-6的含量 | 第23-24页 |
1.4 统计方法 | 第24页 |
1.5 实验结果 | 第24-31页 |
1.5.1 人脐静脉内皮细胞的鉴定 | 第24-25页 |
1.5.2 不同浓度脂多糖对人脐静脉内皮细胞的影响 | 第25-29页 |
1.5.3 细胞培养上清液IL-6检测结果 | 第29-31页 |
1.6 讨论 | 第31-32页 |
参考文献 | 第32-34页 |
第二章 当归有效部位(有机酸)对损伤内皮的作用及机制研究 | 第34-53页 |
2.1 实验材料 | 第35-37页 |
2.1.1 实验药物 | 第35页 |
2.1.2 主要试剂 | 第35-36页 |
2.1.3 主要仪器设备 | 第36页 |
2.1.4 试剂配制 | 第36-37页 |
2.2 实验方法 | 第37-43页 |
2.2.1 当归有效部位(有机酸)的提取 | 第37-38页 |
2.2.2 高效液相色谱法测定当归有效部位(有机酸)中阿魏酸含量 | 第38-39页 |
2.2.3 CCK-8法检测阿魏酸钠对HUVECs的毒性试验 | 第39页 |
2.2.4 当归有效部位(有机酸)对损伤内皮的作用 | 第39-40页 |
2.2.5 免疫荧光法检测TLR4、NF-κB蛋白表达 | 第40页 |
2.2.6 Westernblot检测VCAM-1、LOX-1、MCP-1蛋白表达 | 第40-43页 |
2.2.7 ELISA测细胞培养上清液中IL-6的含量 | 第43页 |
2.2.8 统计学处理 | 第43页 |
2.3 结果 | 第43-49页 |
2.3.1 高效液相色谱法检测当归有效部位(有机酸)中阿魏酸含量 | 第43-44页 |
2.3.2 当归有效部位(有机酸)对HUVECs生长的影响 | 第44页 |
2.3.3 当归有效部位(有机酸)对 HUVECs TLR4、NF-κB 表达的影响 | 第44-47页 |
2.3.4 当归有效部位(有机酸)对 HUVECs VCAM-1、LOX-1、MCP-1 表达的影响 | 第47-48页 |
2.3.5 当归有效部位(有机酸)对HUVECsIL-6的影响 | 第48-49页 |
2.4 讨论 | 第49-51页 |
参考文献 | 第51-53页 |
第三章 阿魏酸钠对损伤内皮细胞的作用观察 | 第53-60页 |
3.1 实验材料 | 第53页 |
3.1.1 主要试剂 | 第53页 |
3.1.2 主要仪器与设备 | 第53页 |
3.2 实验方法 | 第53-55页 |
3.2.1 阿魏酸钠对损伤内皮的作用 | 第53-54页 |
3.2.2 免疫荧光法检测TLR4、NF-κB蛋白表达 | 第54页 |
3.2.3 Westernblot检测VCAM-1、LOX-1、MCP-1蛋白表达 | 第54页 |
3.2.4 ELISA法测细胞培养上清液中IL-6的含量 | 第54页 |
3.2.5 统计学处理 | 第54-55页 |
3.3 结果 | 第55-58页 |
3.3.1 阿魏酸钠对HUVECs TLR4、NF-κB表达的影响 | 第55-57页 |
3.3.2 阿魏酸钠对HUVECs VCAM-1、LOX-1、MCP-1表达的影响 | 第57页 |
3.3.3 阿魏酸钠对HUVECs IL-6表达的影响 | 第57-58页 |
3.4 讨论 | 第58-60页 |
第四章 结论 | 第60页 |
创新点 | 第60-61页 |
文献综述 | 第61-67页 |
参考文献 | 第64-67页 |
在学期间的研究成果 | 第67-68页 |
致谢 | 第68页 |