摘要 | 第3-5页 |
abstract | 第5-6页 |
第1章 文献综述 | 第9-13页 |
1.1 有机磷农药概述 | 第9页 |
1.2 微生物降解有机磷农药的机制 | 第9-10页 |
1.3 木霉菌概述 | 第10页 |
1.4 木霉降低蔬菜农残的理论基础 | 第10-11页 |
1.5 木霉降解有机磷农药的可能机制 | 第11-12页 |
1.6 研究意义 | 第12-13页 |
第2章 木霉对番茄根部辛硫磷残留量的影响及生理机制 | 第13-25页 |
2.1 材料与方法 | 第13-17页 |
2.1.1 供试材料 | 第13-14页 |
2.1.2 试验设计 | 第14页 |
2.1.3 辛硫磷含量的测定 | 第14页 |
2.1.4 解毒相关酶GST、PPO、POD活力测定 | 第14-15页 |
2.1.5 AsA和DHA含量和谷胱甘肽含量的测定 | 第15-16页 |
2.1.6 番茄根部总RNA提取、纯化和cDNA合成 | 第16-17页 |
2.1.7 荧光实时定量PCR(qRT-PCR)分析 | 第17页 |
2.1.8 数据分析 | 第17页 |
2.2 结果与分析 | 第17-22页 |
2.2.1 木霉对辛硫磷残留量的影响 | 第17-18页 |
2.2.2 木霉对番茄根部POD和PPO活性的影响 | 第18-19页 |
2.2.3 木霉对番茄根部AsA和GSH含量的影响 | 第19页 |
2.2.4 木霉对番茄根部GST酶活力的关系 | 第19-20页 |
2.2.5 木霉对番茄根部解毒基因表达的影响 | 第20-22页 |
2.3 讨论 | 第22-24页 |
2.4 结论 | 第24-25页 |
第3章 木霉诱导番茄辛硫磷降解的转录组分析 | 第25-35页 |
3.1 材料与方法 | 第25-28页 |
3.1.1 供试材料 | 第25页 |
3.1.2 试验设计 | 第25页 |
3.1.3 cDNA文库的构建及Illumina测序 | 第25页 |
3.1.4 转录组数据与番茄基因组序列对比 | 第25-26页 |
3.1.5 基因功能注释 | 第26页 |
3.1.6 候选基因的qRT-PCR验证分析 | 第26-28页 |
3.2 结果与分析 | 第28-34页 |
3.2.1 转录组数据的分析 | 第28-30页 |
3.2.2 差异基因表达分析 | 第30页 |
3.2.3 木霉诱导番茄降解辛硫磷关键基因的筛选 | 第30-33页 |
3.2.4 筛选的差异表达基因的验证 | 第33-34页 |
3.3 结论与讨论 | 第34-35页 |
第4章 结论 | 第35-37页 |
参考文献 | 第37-43页 |
缩略语词汇表 | 第43-45页 |
致谢 | 第45-47页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第47页 |