摘 要 | 第6-8页 |
英文摘要 | 第8页 |
英文缩略符号表 | 第10-11页 |
1 引言 | 第11-24页 |
1.1 高分子量谷蛋白亚基及其在小麦品质中的重要作用 | 第12-14页 |
1.1.1 高分子量谷蛋白亚基类型及其遗传控制 | 第12-13页 |
1.1.2 高分子量谷蛋白亚基与小麦烘烤品质的重要关系 | 第13页 |
1.1.3 我国小麦亚基和亚基组合的特点 | 第13-14页 |
1.2 高分子量谷蛋白亚基的研究方法及其应用进展 | 第14-20页 |
1.2.1 电泳技术 | 第15-17页 |
1.2.1.1 十二烷基硫酸钠聚丙烯酰胺凝胶电泳技术 | 第15-16页 |
1.2.1.2 其它电泳技术 | 第16-17页 |
1.2.2 分子标记(Molecular Marker)技术 | 第17-19页 |
1.2.2.1 高分子量谷蛋白亚基的结构 | 第17页 |
1.2.2.2 PCR技术的发展和应用 | 第17-18页 |
1.2.2.3 PCR技术的应用前景 | 第18-19页 |
1.2.3 免疫化学及其它方法 | 第19-20页 |
1.3 太谷核不育小麦及其在育种中的应用 | 第20-23页 |
1.3.1 太谷核不育小麦的发现、定位及命名 | 第20页 |
1.3.2 太谷核不育小麦的形态特征和异交结实率 | 第20-21页 |
1.3.2.1 形态特征 | 第20-21页 |
1.3.2.2 异交结实率 | 第21页 |
1.3.3 太谷核不育小麦的特性 | 第21页 |
1.3.4 太谷核不育小麦在育种上的应用 | 第21-23页 |
1.3.4.1 小麦轮回选择育种的历史 | 第21-22页 |
1.3.4.2 轮回选择的概念及特点 | 第22页 |
1.3.4.3 太谷核不育小麦的育种成就 | 第22-23页 |
1.4 本研究的目的和意义 | 第23-24页 |
2 材料与方法 | 第24-31页 |
2.1 试验材料 | 第24页 |
2.2 试验方案 | 第24-25页 |
2.2.1 基础群体及轮选群体的组建 | 第24-25页 |
2.2.2 材料的种植和管理 | 第25页 |
2.2.3 苗期分子标记 | 第25页 |
2.2.4 种子收获后生化标记 | 第25页 |
2.3 试验方法 | 第25-31页 |
2.3.1 半粒法测定HMW-GS | 第25-27页 |
2.3.1.1 样品提取方法 | 第25页 |
2.3.1.2 凝胶电泳方法 | 第25-27页 |
2.3.1.3 2*、4和5亚基的分辨 | 第27页 |
2.3.2 PCR扩增方法 | 第27-30页 |
2.3.2.1 微量CTAB法提取样品总DNA | 第27-28页 |
2.3.2.2 PCR反应 | 第28-29页 |
2.3.2.3 电泳检测 | 第29页 |
2.3.2.4 所用溶液的配制 | 第29-30页 |
2.3.3 农艺性状的测定 | 第30-31页 |
3 结果与分析 | 第31-44页 |
3.1 轮选群体的育性表现 | 第31页 |
3.2 DNA分子标记结果 | 第31-35页 |
3.2.1 DNA的提取 | 第31-32页 |
3.2.2 1Dx5亚基PCR反应结果 | 第32-33页 |
3.2.2.1 PCR反应程序的优化 | 第32-33页 |
3.2.2.2 PCR检测的结果 | 第33页 |
3.2.3 1Dy10(12)亚基PCR扩增结果 | 第33-34页 |
3.2.4 1B 14+15亚基PCR扩增结果 | 第34-35页 |
3.3 轮选群体生化标记的结果 | 第35-38页 |
3.3.1 群体HMW-GS的组成规律 | 第35-36页 |
3.3.2 可育株的HMW-GS的组成变化规律 | 第36-37页 |
3.3.3 不育株的HMW-GS的组成变化规律 | 第37-38页 |
3.4 轮选群体的HMW-GS与亲本的不同 | 第38-40页 |
3.5 1Dx5亚基分子标记与生化标记结果的一致性 | 第40-41页 |
3.6 轮选群体的农艺性状表现 | 第41-44页 |
4 讨论 | 第44-47页 |
4.1 轮选群体HMW-GS改良的效果 | 第44页 |
4.2 分子标记与生化标记选择效果之比较 | 第44-45页 |
4.3 小麦HMW-GS的异质性问题 | 第45页 |
4.4 关于使用Glu-D1y基因引物的必要性 | 第45-46页 |
4.5 进一步的研究设想 | 第46-47页 |
5 结论 | 第47-49页 |
参 考 文 献 | 第49-56页 |
附 表 | 第56-57页 |
致 谢 | 第57-58页 |
攻读学位期间发表的论文 | 第58页 |