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用SSH方法筛选Cbfal基因的靶基因

中文摘要第3-4页
英文摘要第4页
目录第5-7页
引言第7-16页
    一 文献综述第7-13页
        (一) 骨骼的发育及其影响因素第7-8页
        (二) 成骨细胞分化相关的转录因子的研究及进展第8-10页
        (三) 分离特异表基因的方法研究以及进展第10-13页
    二 本论文的研究内容和意义第13-16页
材料和方法第16-29页
    一 实验材料第16-17页
        1 细胞及其培养试剂第16页
        2 细胞转染以及RNA 制备试剂第16页
        3 SSH 相关试剂以及药品第16页
        4 主要仪器及设备第16-17页
    二 实验方法第17-29页
        1 MLO-Y4 细胞的培养第17页
        2 C3H10T1/2 细胞的培养第17-18页
        3 大肠杆菌感受态细胞的制备第18页
        4 感受态细胞的转化及α互补筛选第18-19页
        5 转染质粒的制备第19-20页
        6 细胞的转染第20页
        7 RNA 的制备及电泳检测第20-21页
        8 RT-PCR第21页
        9 PCR- Selected subtraction(抑制性消减杂交SSH)第21-26页
        10 Virtual Northern blot第26-29页
结果与分析第29-38页
    一 转染绿色荧光蛋白结果第29页
    二 转染效率检测的RT-PCR 的结果第29-30页
    三 抑制性消减杂交(SSH)的结果第30-38页
        1 PCR 法合成dscDNA第30-31页
        2 回收产物经过 RsaI 酶切后电泳结果第31页
        3 酶切后产物与 Adaptor 连接 PCR 检测结果第31-32页
        4 第一次 PCR 结果第32页
        5 第二次 PCR 结果第32-34页
        6 文库的构建第34页
        7 Virtual Northern Blot 结果分析第34-35页
        8 测序结果分析第35-37页
        9 在MLO-Y4细胞中Cbfa1对Osx的作用第37-38页
讨 论第38-41页
    一 细胞转染第38页
    二 SSH 成功的必要条件第38-39页
    三 测序结果分析第39-40页
    四 Cbfa1 在 MLO-Y4 细胞中诱导 Osx 的表达第40页
    五 SSH 方法的缺欠第40-41页
结 论第41-42页
参考文献第42-46页
致 谢第46页

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