| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 主要英文缩略词表 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-18页 |
| 第一章 EZH2在胃癌组织中的表达及其与临床病理参数和环境因素的关系 | 第18-41页 |
| 1 实验材料 | 第18-22页 |
| 1.1 组织标本及细胞株 | 第18-20页 |
| 1.2 主要仪器及设备 | 第20页 |
| 1.3 实验试剂 | 第20-22页 |
| 2 实验方法 | 第22-31页 |
| 2.1 HE染色法 | 第22-25页 |
| 2.2 组织总RNA的提取 | 第25页 |
| 2.3 RNA反转录 | 第25-26页 |
| 2.4 实时荧光定量PCR(real-time PCR) | 第26-28页 |
| 2.5 细胞培养 | 第28-29页 |
| 2.6 Western blot实验 | 第29-31页 |
| 2.7 统计学分析 | 第31页 |
| 3 结果 | 第31-37页 |
| 3.1 EZH2基因mRNA在胃癌组织中的表达与临床病理参数的关系 | 第31-33页 |
| 3.2 环境因素与胃癌组织中EZH2基因mRNA表达的相互关系 | 第33-34页 |
| 3.3 不同胃癌细胞株中EZH2基因mRNA的表达 | 第34-35页 |
| 3.4 不同胃癌细胞株中EZH2蛋白表达 | 第35-37页 |
| 4 讨论 | 第37-41页 |
| 第二章 EZH2对胃癌MKN-45细胞株细胞生物学特性的影响及其机制探究 | 第41-65页 |
| 1 实验材料 | 第41-42页 |
| 1.1 药品和试剂 | 第41-42页 |
| 1.2 仪器设备 | 第42页 |
| 2 实验方法 | 第42-49页 |
| 2.1 细胞培养 | 第42页 |
| 2.2 细胞转染 | 第42-45页 |
| 2.3 MTT法检测细胞增值率 | 第45-46页 |
| 2.4 MTT检测细胞耐药性 | 第46页 |
| 2.5 应用RT-PCR检测特定基因的表达情况 | 第46-47页 |
| 2.6 免疫印迹 | 第47页 |
| 2.7 细胞总蛋白提取 | 第47页 |
| 2.8 流式细胞仪检测细胞周期 | 第47-48页 |
| 2.9 Transwell体外侵袭实验 | 第48-49页 |
| 2.10 划痕试验 | 第49页 |
| 2.11 统计分析处理 | 第49页 |
| 3 结果 | 第49-60页 |
| 3.1 siRNA转染MKN-45胃癌细胞株后成功下调EZH2基因mRNA的表达 | 第49-51页 |
| 3.2 siRNA干扰胃癌细胞株MKN-45后EZH2基因mRNA的表达 | 第51-52页 |
| 3.3 siRNA干扰EZH2表达后对E-cadherin基因mRNA表达的影响 | 第52-53页 |
| 3.4 siRNA干扰MKN-45细胞EZH2表达后对E-cadherin表达的影响 | 第53-55页 |
| 3.5 siRNA干扰MKN-45细胞EZH2表达后细胞周期变化 | 第55-56页 |
| 3.6 siRNA干扰MKN-45细胞EZH2表达后细胞增殖能力变化 | 第56-57页 |
| 3.7 siRNA干扰MKN-45细胞EZH2表达后对细胞耐药性的影响 | 第57页 |
| 3.8 siRNA干扰MKN-45细胞EZH2表达后细胞侵袭力的改变 | 第57-59页 |
| 3.9 siRNA干扰MKN-45细胞EZH2表达后细胞迁移能力的改变 | 第59-60页 |
| 4 讨论 | 第60-65页 |
| 结论 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-71页 |
| 综述 EZH2在肿瘤进展中的作用 | 第71-83页 |
| 参考文献 | 第78-83页 |
| 研究生期间科研成果 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84页 |
