中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
目录 | 第8-11页 |
缩略语/符号说明 | 第11-13页 |
前言 | 第13-15页 |
研究现状、成果 | 第13-14页 |
研究目的、方法 | 第14-15页 |
对象与方法 | 第15-29页 |
1 动物饲养及模型的建立、取材及组织学检测 | 第15-16页 |
1.1 实验动物及主要仪器和试剂 | 第15页 |
1.1.1 实验动物 | 第15页 |
1.1.2 主要仪器 | 第15页 |
1.1.3 主要试剂 | 第15页 |
1.2 实验方法 | 第15-16页 |
1.2.1 大鼠糖尿病模型的建立、分组 | 第15-16页 |
1.2.2 标本采集 | 第16页 |
1.2.3 生化指标检测 | 第16页 |
2 肺组织MASSON染色观察纤维化情况 | 第16-18页 |
2.1 主要仪器和试剂 | 第16-18页 |
2.1.1 主要仪器 | 第17页 |
2.1.2 主要试剂 | 第17页 |
2.1.3 实验步骤 | 第17-18页 |
3 ELISA技术检测血标本和肺组织中的AngⅡ表达 | 第18-19页 |
3.1 主要仪器和试剂 | 第18页 |
3.1.1 主要仪器 | 第18页 |
3.1.2 主要试剂 | 第18页 |
3.2 实验方法 | 第18-19页 |
3.2.1 肺组织总蛋白提取与浓度测定 | 第18-19页 |
3.2.2 实验步骤 | 第19页 |
4 RT-PCR技术测定大鼠肺组织AT_1R、TGF-β1的表达 | 第19-24页 |
4.1 主要仪器和试剂 | 第19-20页 |
4.1.1 主要仪器 | 第19-20页 |
4.1.2 主要试剂 | 第20页 |
4.2 实验方法 | 第20-24页 |
4.2.1 实验准备 | 第20-21页 |
4.2.2 实验步骤 | 第21-24页 |
5 Western Blotting技术测定各组大鼠肺组织AT_1R、TGF-β1的表达 | 第24-28页 |
5.1 主要仪器和试剂 | 第24-25页 |
5.1.1 主要仪器 | 第24-25页 |
5.1.2 主要试剂 | 第25页 |
5.2 实验方法 | 第25-28页 |
5.2.1 肺组织总蛋白的提取与浓度测定 | 第25-26页 |
5.2.2 实验步骤 | 第26-28页 |
6 统计学方法 | 第28-29页 |
结果 | 第29-36页 |
1 动物模型 | 第29-30页 |
1.1 实验动物一般状况 | 第29页 |
1.2 实验动物的成模情况 | 第29页 |
1.3 实验结束时各组大鼠的体重、血糖及其它生化指标 | 第29-30页 |
2 肺组织MASSON染色检查结果 | 第30页 |
3 ELISA测定AngⅡ蛋白表达结果 | 第30-31页 |
4 RT-PCR测定结果 | 第31-33页 |
4.1 琼脂糖凝胶电泳鉴定PCR扩增结果 | 第31页 |
4.2 RT-PCR测定各目的基因表达水平 | 第31-33页 |
4.2.1 各目的基因及管家基因RT-PCR扩增曲线 | 第31-33页 |
4.2.2 各待测基因表达的统计学分析 | 第33页 |
5 Western Blotting测定结果 | 第33-36页 |
5.1 大鼠肺组织AT_1R蛋白表达测定结果 | 第33-34页 |
5.2 大鼠肺组织TGF-β1蛋白表达测定结果 | 第34-36页 |
讨论 | 第36-46页 |
1 动物模型的建立 | 第37页 |
2 糖尿病性肺纤维化的研究现状 | 第37-41页 |
2.1 糖基化终产物产生过多 | 第38-39页 |
2.2 氧化应激 | 第39页 |
2.3 基质金属蛋白酶/金属蛋白酶组织抑制因子降解酶系统失衡 | 第39-40页 |
2.4 局部RAAS系统的激活 | 第40-41页 |
2.5 转化生长因子-β1/Smad信号转导通路的过度激活 | 第41页 |
3 局部RAAS系统的激活在糖尿病肺纤维化中的作用 | 第41-42页 |
3.1 RAAS系统与局部RAAS系统 | 第41-42页 |
3.2 DM时RAAS变化及原因分析 | 第42页 |
4 GLP-1 与肺纤维化 | 第42-46页 |
4.1 GLP-1 及其类似物利拉鲁肽的概述 | 第43-44页 |
4.2 GLP-1 及其类似物对糖尿病大鼠肺纤维化的作用 | 第44-46页 |
结论 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-54页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第54-55页 |
综述 | 第55-65页 |
综述参考文献 | 第60-65页 |
致谢 | 第65页 |