| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第1章 绪论 | 第13-20页 |
| 1.1 加速溶剂萃取技术应用进展 | 第13-17页 |
| 1.1.1 加速溶剂萃取工作原理和影响因素 | 第13-16页 |
| 1.1.2 ASE 技术在植物源基质样品中的应用 | 第16-17页 |
| 1.1.3 主要存在的问题与解决方法 | 第17页 |
| 1.1.4 结论 | 第17页 |
| 1.2 超高效液相色谱仪简介 | 第17-18页 |
| 1.3 本课题的意义和研究内容 | 第18-20页 |
| 第2章 加速溶剂萃取-超高效液相色谱法结合固相萃取高灵敏检测食用菌中甲基硫菌灵、环丙氨嗪及其各自代谢物的方法 | 第20-32页 |
| 摘要 | 第20页 |
| 2.1 引言 | 第20-22页 |
| 2.2 仪器与试剂 | 第22-24页 |
| 2.2.1 仪器 | 第22页 |
| 2.2.2 试剂 | 第22-23页 |
| 2.2.3 样品萃取与净化 | 第23-24页 |
| 2.2.4 超高效液相分析 | 第24页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第24-31页 |
| 2.3.1 检测波长的选择 | 第24-25页 |
| 2.3.2 流动相条件的优化 | 第25-26页 |
| 2.3.3 样品的萃取与净化 | 第26-28页 |
| 2.3.4 方法的选择性 | 第28-29页 |
| 2.3.5 线性和检出限 | 第29页 |
| 2.3.6 精确度 | 第29-30页 |
| 2.3.7 样品分析 | 第30-31页 |
| 2.4 结论 | 第31-32页 |
| 第3章 选择加速溶剂萃取-超高效液相色谱法测定黑苦荞及相关茶饮中蒽醌类物质 | 第32-45页 |
| 摘要 | 第32页 |
| 3.1 引言 | 第32-33页 |
| 3.2 实验部分 | 第33-37页 |
| 3.2.1 试剂 | 第33-34页 |
| 3.2.2 仪器 | 第34页 |
| 3.2.3 样品收集 | 第34-35页 |
| 3.2.4 萃取方法 | 第35-36页 |
| 3.2.5 UPLC 分析与定量 | 第36-37页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第37-44页 |
| 3.3.1 SASE 方法的开发 | 第37-40页 |
| 3.3.2 比较 Ref-SPE、Ult-SPE、PLE-SPE 和 SASE | 第40-41页 |
| 3.3.3 方法的确证 | 第41-44页 |
| 3.4 结论 | 第44-45页 |
| 第4章 加速溶剂萃取-超高效液相色谱法结合分子印迹固相萃取选择性检测减肥茶中种蒽醌类物质 | 第45-62页 |
| 摘要 | 第45页 |
| 4.1 引言 | 第45-47页 |
| 4.2 实验部分 | 第47-50页 |
| 4.2.1 试剂 | 第47-48页 |
| 4.2.2 仪器与分析条件 | 第48页 |
| 4.2.3 分子印迹微球的制备 | 第48页 |
| 4.2.4 表征 | 第48-49页 |
| 4.2.5 评估分子识别性能 | 第49页 |
| 4.2.6 减肥茶样品的提取 | 第49页 |
| 4.2.7 MIP-SPE 的过程 | 第49-50页 |
| 4.2.8 UPLC 分析 | 第50页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第50-61页 |
| 4.3.1 MIP 的制备 | 第50-51页 |
| 4.3.2 影响 MIP 的聚合条件和吸附性能 | 第51-54页 |
| 4.3.3 MIP 的表征与特异性评价 | 第54-55页 |
| 4.3.4 键和研究和斯卡德分析 | 第55-56页 |
| 4.3.5 优化 MIP-SPE 程序 | 第56-58页 |
| 4.3.6 聚合物的选择性 | 第58-59页 |
| 4.3.7 方法的评估 | 第59-60页 |
| 4.3.8 实际样品分析 | 第60-61页 |
| 4.4 结论 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文 | 第76页 |
