| 英文缩写词表 | 第7-10页 |
| 提要 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-12页 |
| 第一章 综述 | 第12-28页 |
| 第一部分 系统性红斑狼疮T淋巴细胞的异常及其在发病中的作用 | 第12-23页 |
| 第二部分 系统性红斑狼疮T细胞活化和克隆扩增的特点 | 第23-28页 |
| 第二章 实验材料及方法 | 第28-41页 |
| 一、 实验动物 | 第28页 |
| 二、 主要试剂 | 第28-33页 |
| 1 试剂及来源 | 第28-30页 |
| 2 主要实验试剂配制 | 第30-33页 |
| 三、 主要实验仪器 | 第33-35页 |
| 四、 实验方法 | 第35-41页 |
| (一) RT-PCR-SSCP分析法 | 第35-36页 |
| 1 细胞总RNA的提取 | 第35页 |
| 2 TCR Vβ基因的逆转录聚合酶链反应(RT-PCR) | 第35-36页 |
| 3 单链构象多态性分析(SSCP) | 第36页 |
| (二) TCR Vβ6基因CDR3片段核苷酸序列分析 | 第36-38页 |
| 1 DNA片段的回收 | 第36-37页 |
| 2 连接反应 | 第37页 |
| 3 重组质粒的转化 | 第37页 |
| 4 转化细胞的筛选与鉴定 | 第37页 |
| 5 质粒DNA的纯化 | 第37-38页 |
| 6 测序PCR反应 | 第38页 |
| 7 测序样品准备及测序 | 第38页 |
| 8 T细胞克隆鉴定 | 第38页 |
| (三) 流式细胞术检测T细胞表型 | 第38-39页 |
| 1 各脏器单细胞悬液的制备 | 第38-39页 |
| 2 染色 | 第39页 |
| 3 检测 | 第39页 |
| (四) 磁珠分离法(MACS)分选细胞 | 第39页 |
| 1 染色 | 第39页 |
| 2 细胞分选 | 第39页 |
| (五) 流式细胞术分选细胞 | 第39-40页 |
| 1 脏器采集 | 第39-40页 |
| 2 染色 | 第40页 |
| 3 细胞分选 | 第40页 |
| 4 分选细胞的RT-PCR-SSCP分析 | 第40页 |
| (六) 图像分析 | 第40-41页 |
| 第三章 实验结果 | 第41-63页 |
| 一、 狼疮鼠各脏器中T细胞克隆性分析 | 第41页 |
| 1 幼年未发病组狼疮鼠的T细胞克隆性 | 第41页 |
| 2 成年发病组狼疮鼠的T细胞克隆性 | 第41页 |
| 二、 成年发病狼疮鼠的T细胞表型分析 | 第41-42页 |
| 1 克隆扩增广泛浸润的T细胞为CD4~+T细胞 | 第42页 |
| 2 狼疮发病鼠中存在活化的CD4~+T细胞 | 第42页 |
| 3 克隆扩增并广泛浸润的T细胞为CD4~+CD69~+T细胞 | 第42页 |
| 三、 狼疮发病鼠中TCR Vβ6亚家族CDR3片段的测序分析 | 第42-44页 |
| 1 (NZB×NZW)F1成年发病鼠的CDR3序列特点 | 第42-43页 |
| 2 MRL／1pr成年发病鼠的CDR3序列特点 | 第43页 |
| 3 两种狼疮模型鼠的CDR3序列的共同特点 | 第43页 |
| 4 图像分析结果 | 第43-44页 |
| 附表 | 第44-52页 |
| 附图 | 第52-63页 |
| 第四章 讨论 | 第63-68页 |
| 第五章 结论 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-86页 |
| 攻读博士学位期间发表的文章 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87-88页 |
| 中文摘要 | 第88-91页 |
| 英文摘要 | 第91页 |
