| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 前言 | 第10-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-17页 |
| 1 研究背景 | 第11-12页 |
| 2 生物碱的体内代谢研究现状 | 第12页 |
| 3 马钱子生物碱及其代谢物定量方法研究 | 第12-13页 |
| 4 立题依据 | 第13-14页 |
| 参考文献 | 第14-17页 |
| 第二章 基于LC-HRMS的马钱子生物碱大鼠体内代谢研究 | 第17-48页 |
| 引言 | 第17-19页 |
| 1 分析方法的建立 | 第19-22页 |
| 1.1 实验仪器和试剂 | 第19页 |
| 1.1.1 实验仪器 | 第19页 |
| 1.1.2 药品和试剂 | 第19页 |
| 1.1.3 实验动物 | 第19页 |
| 1.2 实验方法 | 第19-20页 |
| 1.2.1 动物给药 | 第19-20页 |
| 1.2.2 大鼠尿样的前处理 | 第20页 |
| 1.3 UHPLC-MS分析条件 | 第20-22页 |
| 1.3.1 色谱分离条件 | 第20页 |
| 1.3.2 质谱分析条件 | 第20-22页 |
| 1.4 数据处理方法 | 第22页 |
| 2. 分析结果与讨论 | 第22-45页 |
| 2.1 大鼠尿液中马钱子生物碱代谢产物的初步推断 | 第22-26页 |
| 2.2 大鼠尿液中STR代谢产物的初步推断 | 第26-34页 |
| 2.3 大鼠尿液中BRU代谢产物的初步推断 | 第34-39页 |
| 2.4 STR和BRU代谢途径的推断 | 第39-41页 |
| 2.5 分析条件的优化与讨论 | 第41-45页 |
| 2.5.1 色谱条件的选择 | 第41-43页 |
| 2.5.2 尿样前处理条件的优化 | 第43-44页 |
| 2.5.3 质谱条件分析的优化 | 第44-45页 |
| 3 本章小结 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-48页 |
| 第三章 LC-HRMS法测人血中的马钱子生物碱及代谢物 | 第48-68页 |
| 引言 | 第48-49页 |
| 1 分析方法的建立 | 第49-54页 |
| 1.1 实验仪器和试剂 | 第49-50页 |
| 1.1.1 实验仪器 | 第49页 |
| 1.1.2 药品和试剂 | 第49-50页 |
| 1.2 代谢物对照品的合成及鉴定 | 第50-52页 |
| 1.2.1 代谢物的合成 | 第50-52页 |
| 1.2.1.1 代谢物的合成及纯度检查 | 第50-51页 |
| 1.2.1.2 代谢物的纯度检查 | 第51-52页 |
| 1.2.2 代谢物结构的鉴定 | 第52页 |
| 1.3 溶液的配制 | 第52-53页 |
| 1.3.1 储备液和工作液的配制 | 第52-53页 |
| 1.3.2 内标溶液的配制 | 第53页 |
| 1.3.3 标准曲线样品和质控样品的配制 | 第53页 |
| 1.4 血样的预处理 | 第53页 |
| 1.5 HPLC-HRMS分析条件 | 第53-54页 |
| 1.5.1 色谱分离条件 | 第53-54页 |
| 1.5.2 质谱分析条件 | 第54页 |
| 2 基于LC-HRMS的定量方法学验证 | 第54-60页 |
| 2.1 专属性 | 第55-57页 |
| 2.2 标准曲线与线性范围 | 第57页 |
| 2.3 灵敏度 | 第57页 |
| 2.4 准确度和精密度 | 第57-58页 |
| 2.5 基质效应和提取回收率 | 第58-59页 |
| 2.6 稳定性 | 第59-60页 |
| 3 分析条件的优化与讨论 | 第60-64页 |
| 3.1 色谱条件的选择 | 第60-62页 |
| 3.2 血样前处理条件的优化 | 第62-64页 |
| 3.3 质谱条件的优化 | 第64页 |
| 4 LC-HRMS方法的应用 | 第64页 |
| 5 本章小结 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-68页 |
| 全文总结 | 第68-69页 |
| 课题创新之处 | 第69页 |
| 下一步研究设想 | 第69-70页 |
| 附录一 LC-HRMS技术在药物代谢研究中的应用 | 第70-89页 |
| 附录二 合成代谢物结构的鉴定 | 第89-94页 |
| 附录三 在读期间发表的文章 | 第94-95页 |
| 缩写字母表 | 第95-97页 |
| 致谢 | 第97-98页 |