| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩写词对照表 | 第9-14页 |
| 引言 | 第14-16页 |
| 第一章 艾叶挥发油NLC的制备及质量评价 | 第16-52页 |
| 1 实验仪器、材料与试剂 | 第16-17页 |
| 1.1 实验仪器 | 第16页 |
| 1.2 实验材料 | 第16-17页 |
| 1.3 实验药品及试剂 | 第17页 |
| 2 实验方法 | 第17-25页 |
| 2.1 艾叶挥发油NLC的制备 | 第17-20页 |
| 2.1.1 制备流程 | 第17页 |
| 2.1.2 制备工艺优化 | 第17-19页 |
| 2.1.3 处方优化 | 第19-20页 |
| 2.2 艾叶挥发油NLC多成分含量测定方法的建立 | 第20-22页 |
| 2.2.1 GC条件 | 第20-21页 |
| 2.2.2 溶液的配制 | 第21页 |
| 2.2.3 方法学考察 | 第21-22页 |
| 2.2.4 样品测定 | 第22页 |
| 2.3 质量评价 | 第22-25页 |
| 2.3.1 外观 | 第22-23页 |
| 2.3.2 粒径、PDI及zeta电位 | 第23页 |
| 2.3.3 包封率及载药量的测定 | 第23页 |
| 2.3.4 艾叶挥发油NLC指纹图谱评价 | 第23-24页 |
| 2.3.5 体外释药研究 | 第24页 |
| 2.3.6 药物稳定性研究 | 第24-25页 |
| 3 实验结果 | 第25-49页 |
| 3.1 艾叶挥发油NLC的制备 | 第25-31页 |
| 3.1.1 制备工艺优化 | 第25-28页 |
| 3.1.2 处方优化 | 第28-31页 |
| 3.1.3 最终处方及工艺 | 第31页 |
| 3.2 艾叶挥发油NLC多成分含量测定方法的建立 | 第31-36页 |
| 3.2.1 方法学考察 | 第31-36页 |
| 3.2.2 样品测定 | 第36页 |
| 3.3 质量评价 | 第36-49页 |
| 3.3.1 外观 | 第36-37页 |
| 3.3.2 粒径、PDI及Zeta电位 | 第37-38页 |
| 3.3.3 包封率及载药量测定 | 第38页 |
| 3.3.4 艾叶挥发油NLC指纹图谱评价 | 第38-46页 |
| 3.3.5 体外释放度 | 第46-47页 |
| 3.3.6 药物稳定性实验 | 第47-49页 |
| 4 讨论 | 第49-50页 |
| 5 结论 | 第50-52页 |
| 第二章 艾叶挥发油与其NLC体内药代动力学及组织分布研究 | 第52-69页 |
| 1 实验仪器、材料及动物 | 第52-53页 |
| 1.1 实验仪器 | 第52-53页 |
| 1.2 实验材料 | 第53页 |
| 1.3 实验动物 | 第53页 |
| 2 实验方法 | 第53-57页 |
| 2.1 艾叶挥发油小鼠体内急性毒性实验 | 第53-54页 |
| 2.2 艾叶挥发油及其NLC大鼠体内药代动力学 | 第54-56页 |
| 2.2.1 色谱条件 | 第54页 |
| 2.2.2 溶液的配制 | 第54页 |
| 2.2.3 血浆样品预处理 | 第54页 |
| 2.2.4 方法学考察 | 第54-55页 |
| 2.2.5 实验设计方案 | 第55-56页 |
| 2.3 NLC在裸鼠体内的组织分布研究 | 第56-57页 |
| 2.3.1 检测条件 | 第56页 |
| 2.3.2 荧光染料的标记 | 第56页 |
| 2.3.3 溶液的配制 | 第56页 |
| 2.3.4 NLC的体内分布研究 | 第56-57页 |
| 3 实验结果 | 第57-67页 |
| 3.1 给药剂量的确定 | 第57-58页 |
| 3.2 艾叶挥发油及其NLC大鼠体内药代动力学 | 第58-64页 |
| 3.2.1 方法学考察 | 第58-62页 |
| 3.2.2 大鼠药代动力学结果 | 第62-64页 |
| 3.3 NLC在裸鼠体内的组织分布研究 | 第64-67页 |
| 3.3.1 裸鼠体内成像 | 第64-66页 |
| 3.3.2 裸鼠主要器官成像 | 第66-67页 |
| 4 讨论 | 第67-68页 |
| 5 结论 | 第68-69页 |
| 第三章 艾叶挥发油及其NLC体内抗乙肝病毒活性研究 | 第69-77页 |
| 1 实验仪器、试剂与材料 | 第69-70页 |
| 1.1 仪器 | 第69页 |
| 1.2 试剂 | 第69-70页 |
| 1.3 材料 | 第70页 |
| 2 实验方法 | 第70-73页 |
| 2.1 鸭乙肝病毒模型的建立 | 第70-71页 |
| 2.1.1 PCR鉴定 | 第70-71页 |
| 2.1.2 1.4%琼脂糖凝胶电泳检测582.2 动物分组与给药 | 第71页 |
| 2.2 动物分组与给药 | 第71-72页 |
| 2.3 样品的采集与检测 | 第72-73页 |
| 2.3.1 样品的采集 | 第72页 |
| 2.3.2 样品检测 | 第72-73页 |
| 3 实验结果 | 第73-75页 |
| 3.1 鸭乙肝病毒模型建立结果 | 第73-74页 |
| 3.2 艾叶挥发油及NLC对鸭血清中DHBV的抑制作用 | 第74页 |
| 3.3 艾叶挥发油及NLC对鸭肝组织中DHBV的抑制作用 | 第74-75页 |
| 4 讨论 | 第75页 |
| 5 结论 | 第75-77页 |
| 第四章 总论 | 第77-79页 |
| 文献综述 | 第79-85页 |
| 参考文献 | 第85-90页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第90-91页 |
| 致谢 | 第91页 |
