| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第9-26页 |
| 1.1 传统法检测DNA甲基转移酶活性 | 第11页 |
| 1.2 比色法检测DNA甲基转移酶活性 | 第11-14页 |
| 1.3 荧光法检测DNA甲基转移酶活性 | 第14-17页 |
| 1.4 表面增强拉曼光谱技术检测DNA甲基转移酶活性 | 第17-18页 |
| 1.5 化学发光/生物发光法检测DNA甲基转移酶活性 | 第18-19页 |
| 1.6 电化学法检测DNA甲基转移酶活性 | 第19-21页 |
| 1.7 电致化学发光法检测DNA甲基转移酶活性 | 第21-25页 |
| 1.7.1 直接电致化学发光法 | 第22-24页 |
| 1.7.2 电致化学发光放大法 | 第24-25页 |
| 1.8 本论文的指导思想 | 第25-26页 |
| 第二章 基于杂交链反应、G-四联体/血红素DNA酶生物传感器检测细胞中甲基转移酶活性的电致化学发光分析 | 第26-39页 |
| 2.1 引言 | 第26-28页 |
| 2.2 实验部分 | 第28-31页 |
| 2.2.1 试剂 | 第28-29页 |
| 2.2.2 仪器设备 | 第29页 |
| 2.2.3 MPA-CdS:Eu NCs的合成 | 第29-30页 |
| 2.2.4 Au NPs的合成 | 第30页 |
| 2.2.5 MPA-CdS:Eu NCs修饰的GCE电极准备 | 第30页 |
| 2.2.6 ECL传感器的构建 | 第30-31页 |
| 2.2.7 细胞培养以及细胞裂解 | 第31页 |
| 2.3 结果和讨论 | 第31-38页 |
| 2.3.1 掺杂对CdS:Eu NCs的ECL性能的影响 | 第31-32页 |
| 2.3.2 ECL检测DNMT1活性的实验可行性分析 | 第32-33页 |
| 2.3.3 该生物传感器的电化学阻抗表征 | 第33-34页 |
| 2.3.4 甲基化的时间选择 | 第34-35页 |
| 2.3.5 DNMT1活性的电致化学发光分析 | 第35-36页 |
| 2.3.6 A549细胞中DNMT1活性的检测 | 第36-37页 |
| 2.3.7 不同细胞的DNMT1活性 | 第37-38页 |
| 2.4 结论 | 第38-39页 |
| 第三章 双信号比率计量电致化学发光法检测DNMT1的活性分析以及抑制剂的评估 | 第39-50页 |
| 3.1 引言 | 第39-41页 |
| 3.2 实验部分 | 第41-43页 |
| 3.2.1 试剂 | 第41-42页 |
| 3.2.2 仪器设备 | 第42页 |
| 3.2.3 MPA-CdS:Eu NCs的合成 | 第42页 |
| 3.2.4 Au NPs的合成 | 第42页 |
| 3.2.5 MPA-CdS:Eu NCs修饰的GCE电极准备 | 第42-43页 |
| 3.2.6 Target DNA-Au NPs的预处理 | 第43页 |
| 3.2.7 电致化学发光传感器的构建 | 第43页 |
| 3.2.8 细胞的培养以及细胞液提取 | 第43页 |
| 3.3 实验和讨论 | 第43-49页 |
| 3.3.1 实验的可行性分析 | 第43-45页 |
| 3.3.2 甲基化作用时间优化 | 第45页 |
| 3.3.3 DNMT1活性的电致化学发光分析 | 第45-47页 |
| 3.3.4 细胞中DNMT1的检测 | 第47-48页 |
| 3.3.5 抑制剂药物的评估 | 第48-49页 |
| 3.4 结论 | 第49-50页 |
| 第四章 结论与创新点 | 第50-52页 |
| 参考文献 | 第52-66页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
